总 CDK12 细胞检测可监测 CDK12 蛋白水平。
CDK12 是一种与转录相关的细胞周期蛋白依赖性激酶(CDK)。它与细胞周期蛋白 K 形成复合物,通过磷酸化 RNA 聚合酶 II(RNAP II)调控基因转录延伸,同时也参与翻译调控。此外,CDK12 在 RNA 剪接、细胞周期进程、细胞增殖、DNA 损伤应答(DDR)以及基因组稳定性维持中发挥作用。由于 CDK12 的突变或扩增与肿瘤发生密切相关,因此 CDK12 已成为癌症治疗中一个极具吸引力的治疗靶点。
总 CDK12 检测可对细胞裂解物中 CDK12 的表达水平进行定量。与蛋白质印迹法不同,该检测完全基于微孔板,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 CDK12 检测使用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体均对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 CDK12 时,加入这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样品中该蛋白的浓度直接成正比,并在免洗涤的检测格式下为评估蛋白的表达水平提供了手段。
HTRF 总 CDK12 检测原理
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解细胞,再将裂解物转移至 384 孔小体积检测板中,之后加入总 CDK12 HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。
HTRF 总 CDK12 双板检测方案
使用 HTRF 试剂检测总 CDK12 可在单个用于培养、刺激和裂解的培养板中完成。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案可实现小型化操作,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。
HTRF 总 CDK12 单板检测方案
将 HeLa 细胞接种到 96 孔板中(50,000 个细胞 / 孔),培养 24 小时。然后用针对 CDK1、CDK2、CDK4、CDK6、CDK7、CDK9 或 CDK12 的特异性 siRNA 以及阴性对照 siRNA 转染细胞。孵育 48 小时后,裂解细胞,将 16µL 裂解物转移至 384 孔小体积白色微孔板中,随后加入 4µL HTRF 总 CDK12 检测抗体。另外,将 4µL 裂解物(补充 12µL 稀释剂 #11)也转移到微孔板中,使用 GAPDH 管家细胞试剂盒(64GAPDHPET/G/H)监测 GAPDH 水平。过夜孵育后记录两个试剂盒的 HTRF 信号。
与转染阴性 siRNA 的细胞相比,转染 CDK12 siRNA 的细胞信号降低了 90%。转染 CDK1、CDK2、CDK4、CDK6、CDK7 或 CDK9 siRNA 的细胞未观察到信号降低。在所有测试条件下,测得的 GAPDH 水平保持不变。数据表明,HTRF 总 CDK12 检测对 CDK12 蛋白的检测具有特异性,且不会与其他 CDK 家族成员发生交叉反应。
总 CDK12 检测的 siRNA 实验
总 CDK12 检测的 siRNA 实验
将多种细胞系(贴壁的 HeLa、HEK293、SHSY5Y 细胞或悬浮细胞如 K562 细胞)以 200,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔微孔板中。孵育 24 小时后,用补充的裂解缓冲液裂解细胞,将 16µL 裂解物转移至 384 孔小体积白色微孔板中,然后加入 4µL HTRF 总 CDK12 检测试剂。过夜孵育后记录 HTRF 信号。
人细胞系中总 CDK12 检测的验证
将 HeLa 细胞以 200,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中的完全培养基中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 6 小时。然后用溶媒(DMSO)、CDK12 PROTAC(BSJ-4-116)、CDK12 结合剂(THZ531)、CRBN 结合剂(沙利度胺)或 100nM 的无关 PROTAC 在 37°C、5% CO₂条件下处理细胞 16 小时。用 50µL 补充的 2 号裂解缓冲液裂解细胞后,将相同的裂解物依次分配到小体积白色检测板中:16µL 用于总 CDK12 检测,另外 4µL(补充 12µL 稀释剂 #11)用于使用 HTRF GAPDH 管家试剂盒(64GAPDHPET/G/H)检测 GAPDH 水平。加入 4µL 相应的试剂盒检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。与溶媒(DMSO)处理的细胞相比,CDK12 PROTAC(BSJ-4-116)诱导 CDK12 蛋白降解,信号降低了 82%。用 CDK12 结合剂、CRBN 结合剂或无关 PROTAC 处理的细胞未观察到信号降低。在所有测试条件下,测得的 GAPDH 水平保持不变(无细胞毒性)。
使用 PROTAC 化合物对总 CDK12 检测的验证
使用 PROTAC 化合物对总 CDK12 检测的验证
将 HeLa 和 K562 细胞以 200,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中的完全培养基中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 6 小时。然后用浓度递增的 CDK12 PROTAC(BSJ-4-116)在 37°C、5% CO₂条件下处理细胞 16 小时。细胞裂解后,将相同的裂解物依次分配到小体积白色检测板中:16µL 用于总 CDK12 检测,另外 4µL(补充 12µL 稀释剂 #11)用于使用 HTRF GAPDH 管家试剂盒(64GAPDHPET/G/H)检测 GAPDH 水平。加入 4µL 相应的试剂盒检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。
正如预期的那样,结果显示用 CDK12 PROTAC 处理后,HeLa 和 K562 细胞中的总 CDK12 呈剂量依赖性降解(半数最大降解浓度分别为 40nM 和 58nM),而 GAPDH 水平保持恒定。
使用 CDK12 PROTAC 对总 CDK9 降解检测的验证
使用 CDK12 PROTAC 对总 CDK9 降解检测的验证
将 K562 细胞在 T175 培养瓶中的完全培养基中于 37°C、5% CO₂条件下培养。孵育 48 小时后,用 3mL 补充的 2 号裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡 30 分钟以裂解细胞。
使用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,将 16µL 每种稀释液转移至小体积白色微孔板中,然后加入 4µL HTRF 总 CDK12 检测试剂。使用等量的裂解物对 HTRF 检测与蛋白质印迹法进行平行比较。
使用 HTRF 总 CDK12 检测时,1200 个细胞 / 孔就足以检测到显著信号,而使用带有 ECL 检测的蛋白质印迹法则需要 3600 个细胞。因此,在这些条件下,HTRF 总 CDK12 检测的灵敏度是蛋白质印迹技术的 3 倍。
总 CDK12 检测中 HTRF 与 WB 的灵敏度比较
CDK 传统上分为两个亚家族成员:协调细胞周期进程的 CDK(CDK1、CDK2、CDK4 和 CDK6)和转录 CDK(CDK7、CDK8、CDK9、CDK12 和 CDK13)。
CDK12(细胞周期蛋白依赖性激酶 12)与细胞周期蛋白 K 形成复合物,调控 RNA 聚合酶 II 的 C 末端结构域(CTD)的磷酸化。CDK12 调控参与 DNA 修复的基因表达,是维持基因组稳定性所必需的。
CDK12 通路
- 应用:细胞信号传导
- 兼容自动化:是
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 兼容的裂解缓冲液:2 号裂解缓冲液
- 分子修饰:总量
- 产品类别:试剂盒
- 样品体积:16µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷蛋白
- 靶标物种:人
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:肿瘤学与炎症
- 单位规格:500 个检测点