Total-CHK1 细胞检测试剂盒旨在监测 CHK1 的表达水平,无论其是否被磷酸化。
该试剂盒与我们的 Phospho-CHK1 ser 345 试剂盒兼容,能够从单个样本中同时分析磷酸化蛋白和总蛋白,从而更好地解读 ATR/CHK1 通路。
HTRF Total CHK1 检测原理
Total-CHK1 检测可定量细胞裂解物中 CHK1 的表达水平。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。
Total-CHK1 检测使用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的不同表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 CHK1 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样本中蛋白质的浓度直接成正比,并且可在无需洗涤的检测格式中评估蛋白质的表达。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解细胞,再将裂解物转移到 384 孔小体积检测板中,最后添加 Total-CHK1 HTRF 检测试剂。
该方案能够监测细胞活力和汇合度。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
使用 HTRF 试剂检测总 CHK1 可在单个板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解,无需洗涤步骤。
这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现小型化,同时保持稳定的 HTRF 质量。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
人 / 鼠 CHK1 检测兼容性:新制癌菌素剂量反应曲线
将人 HEK293 细胞或鼠 NIH/3T3 细胞接种在 96 孔培养处理板中(100,000 个细胞 / 孔),加入完全培养基,在 37°C、5% CO₂ 条件下过夜孵育。然后用不同剂量的新制癌菌素处理细胞 2 小时(37°C、5% CO₂)。移除培养基后,用 50 µl 补充的 #1 裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF Phospho CHK1(Ser 345)或 Total-CHK1 检测试剂。室温孵育过夜后记录 HTRF 信号。
正如预期的那样,新制癌菌素诱导单链 DNA 损伤,导致 CHK1 磷酸化呈剂量依赖性增加,而对人或鼠细胞系中总蛋白的表达水平没有任何影响。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
将人 HEK293 细胞接种在 96 孔培养处理板中(100,000 个细胞 / 孔),加入完全培养基,在 37°C、5% CO₂ 条件下过夜孵育。用不同剂量的新制癌菌素、羟基脲、阿霉素和依托泊苷处理细胞 2 小时(37°C、5% CO₂)。然后移除培养基,用 50 µl 补充的 #1 裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF Phospho CHK1(Ser 345)或 Total-CHK1 检测试剂。室温孵育过夜后记录 HTRF 信号。
不同化合物表现出不同的反应。新制癌菌素、羟基脲和依托泊苷可诱导单链断裂(SSB),能完全诱导 CHK1 磷酸化。而倾向于诱导双链断裂(DSB)的阿霉素则仅引起 CHK1 的部分磷酸化。新制癌菌素、羟基脲、依托泊苷和阿霉素的 EC50 分别为 1.2 µM、0.1 mM、3.3 µM 和 7.1 µM。
此外,新制癌菌素的 EC80 经测定为 3 µM,该浓度被用于评估 ATR/CHK1 通路的抑制剂。
这 4 种化合物均未影响 CHK1 总蛋白的表达水平。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
将人 HEK293 细胞接种在 96 孔培养处理板中(100,000 个细胞 / 孔),加入完全培养基,在 37°C、5% CO₂ 条件下过夜孵育。用不同剂量的 3 种 ATR 或 ATM 通路抑制剂处理细胞 2 小时(37°C、5% CO₂)。然后用 3 µM 新制癌菌素(EC80)再处理细胞 2 小时(37°C、5% CO₂)。移除培养基后,用 50 µl 补充的 #1 裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF Phospho CHK1(Ser 345)或 Total-CHK1 检测试剂。室温孵育过夜后记录 HTRF 信号。
咖啡因是已知的温和 ATR/ATM 通路抑制剂,UCN-1 是强效 CHK1 抑制剂,而 KU55933 仅是 ATM 通路抑制剂。正如预期的那样,UCN-1 能以高 potency(IC50 为 15 nM)完全抑制 CHK1 磷酸化,而咖啡因的效力较弱。KU55933 化合物未诱导 CHK1 磷酸化抑制。
最后,这 3 种测试的抑制剂均未影响 CHK1 总蛋白的表达水平。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
HEK293 细胞在 T175 培养瓶中用完全培养基在 37°C、5% CO₂ 条件下培养至汇合。
移除培养基后,用 3 mL 补充的 #1 裂解缓冲液(1x)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。
使用补充的 #1 裂解缓冲液(1x)对细胞裂解物进行系列稀释,将 16µL 纯样本和每个稀释样本转移到 384 孔小体积微孔板中,然后加入 4µL HTRF Total CHK1 检测试剂。信号记录过夜。
将等量的裂解物上样到凝胶中,以进行 HTRF 和蛋白质印迹法的平行比较。
在这些条件下,HTRF 总 CHK1 检测的灵敏度至少是蛋白质印迹法的 8 倍。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
ATM/CHK2 和 ATR/CHK1 信号通路
双链断裂(DSBs)或单链断裂(SSBs)是最有害的损伤之一,可能威胁基因组完整性。这类损伤可由细胞代谢物的作用或 DNA 损伤剂(如遗传毒性化合物、化疗药物、紫外线(UV)照射或电离辐射)诱导产生。
DNA 损伤应答(DDR)主要由共济失调毛细血管扩张突变蛋白(ATM)和共济失调毛细血管扩张和 Rad3 相关蛋白(ATR)控制,它们是磷酸肌醇 3 - 激酶(PI3K)相关激酶(PIKK)家族的两个成员。
响应 DNA 损伤(SSBs)时,ATR–Chk1 通路和复制检查点应答被激活,介导 G2/M 检查点以阻止细胞周期进程,并为 DNA 修复争取额外时间。ATR 通过其相互作用伙伴 ATRIP 被招募到单链 DNA-RPA 处,这会导致 Chk1 的磷酸化和激活。CHK1 的激活涉及信号转导通路,直至调节 cdc2 / 细胞周期蛋白 B1 的活性和控制 Cdc25A。
许多癌症在 G1/S 检查点存在缺陷,包括那些 p53 功能缺陷的癌症。如果由于 DNA 损伤导致 ATR 通路在 G1 检查点缺陷的细胞中受到抑制,细胞将不会引发细胞周期停滞以进行 DNA 修复,从而导致癌细胞死亡。因此,抑制 ATR 通路已成为一种有吸引力的策略,可选择性地使 p53 缺陷细胞对损伤 DNA 的化疗药物敏感。
创新小分子 Chk1 和 Chk2 抑制剂的鉴定以及检查点调节新策略的验证,结合传统的放疗和化疗方式,有望改善癌症治疗。
人 - 鼠总 CHK1 检测试剂盒
其他规格
- 应用:细胞信号传导
- 兼容自动化:是
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 兼容的裂解缓冲液:#1 裂解缓冲液、#2 裂解缓冲液、#4 裂解缓冲液
- 分子修饰:总蛋白
- 产品类别:试剂盒
- 样本体积:16 µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸蛋白
- 靶标物种:人、鼠
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:肿瘤学与炎症
- 单位规格:500 个检测点