磷酸化组蛋白 H3(Ser10)检测可用于检测组蛋白 H3 尾部的 Ser10 磷酸化,组蛋白 H3 是基因表达和有丝分裂的关键调控因子。Ser10 位点的磷酸化与有丝分裂和减数分裂过程中的染色体凝缩密切相关。
磷酸化组蛋白 H3(Ser10)检测用于测量 Ser10 位点磷酸化的组蛋白 H3。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。磷酸化组蛋白 H3(Ser10)检测使用两种标记抗体:一种带有供体荧光团,另一种带有受体荧光团。第一种抗体经筛选可特异性结合蛋白质上的磷酸化基序,第二种抗体则能不依赖蛋白质的磷酸化状态对其进行识别。蛋白质磷酸化会促使形成包含两种标记抗体的免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。该信号强度与样品中磷酸化蛋白质的浓度直接成正比,且能在无需洗涤的检测形式下评估蛋白质的磷酸化状态。
- 磷酸化组蛋白 H3(Ser10)双板检测方案:双板方案包括先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解细胞,将裂解物转移至 384 孔小体积检测板,之后加入磷酸化组蛋白 H3(Ser10)HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞活力和汇合度。
- 磷酸化组蛋白 H3(Ser10)单板检测方案:使用 HTRF 试剂检测磷酸化组蛋白 H3(Ser10)可在单个培养板中完成,该培养板用于细胞培养、刺激和裂解。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现微型化,同时保持稳定的 HTRF 质量。
将指数生长期的 Hela 细胞培养至 80% 汇合度,并用诺考达唑(Nocodazole)处理 16 小时。移除培养基并裂解细胞后,通过离心收集可溶性上清液。取等量裂解物进行蛋白质印迹法(WB)和 HTRF 的平行比较。结果显示,HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 25 倍。使用 HTRF 磷酸化组蛋白 H3(Ser10)检测,仅需 256 个细胞即可实现最小信号检测,而蛋白质印迹法则需要 6400 个细胞才能产生信号。HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 25 倍。
将 Hela 细胞和 A431 细胞接种到 96 孔板中,用诺考达唑处理 16 小时。诺考达唑是一种抗有丝分裂剂,可使微管解聚并将细胞阻滞在有丝分裂期,此时组蛋白 H3 Ser10 位点的磷酸化达到最大值。移除细胞培养基后,加入 50µl、100µl 或 200µl 裂解缓冲液,孵育 30 分钟。将 16µl 每种裂解物转移至 384 孔小体积白色板中进行 HTRF 分析。将裂解体积增加至 200µl 可改善 HTRF 检测信号的线性。
组蛋白的整体磷酸化水平在细胞周期中波动显著,其特征是有丝分裂期组蛋白 H3 的 Ser10 位点磷酸化达到峰值。极光激酶 B 直接负责有丝分裂期组蛋白 H3 Ser10 位点的磷酸化。极光激酶 A 与 BORA 形成复合物,负责在 G2 期初步激活 PLK1,进而激活细胞周期蛋白依赖性激酶 1,使细胞在 G2/M 转换检查点进入有丝分裂期。极光激酶 A 在人类癌症中经常被扩增,且人类肿瘤中极光激酶 A 的过表达与不良预后和基因组不稳定性相关。此外,极光激酶 B 的高表达水平与胶质母细胞瘤、卵巢癌和肝细胞癌的不良预后相关。
- 应用:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 分子修饰:磷酸化
- 产品类别:试剂盒
- 样品体积:16µL
- 运输条件:干冰运输
- 目标类别:磷酸化蛋白
- 目标物种:人、小鼠
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:神经科学
- 单位规格:50,000 个检测点