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HTRF (H) IKKA TOTAL KIT - 50K PTS

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概述

核因子 κB 激酶亚基 α 抑制剂（IKKα）也称为 IKK1，是一种由 CHUK 人类基因编码的蛋白激酶。IKKα 是 IκB 激酶复合物（IKK）的组成部分，该复合物由催化亚基 IKKα、IKKβ 和调节亚基 NF-κB 必需调节剂（NEMO，即 IKKγ）构成。

IKK 复合物的激活取决于 IKKβ（Ser177/180）或 IKKα（Ser176/Ser180）的磷酸化，这会导致复合物构象改变和激酶激活。IKKα 是 NF-κB 通路的关键调节因子，该通路位于多种促炎因子的下游，包括白细胞介素 - 1、肿瘤坏死因子 α（TNFα）和 Toll 样受体激动剂。尽管 IKKα 和 IKKβ 高度同源，结构相似性超过 50%，但它们具有不同的下游底物和非重叠的功能。

工作原理

总 IKKα 检测原理

总 IKKα 检测用于定量细胞裂解物中 IKKα 的表达水平。与蛋白质印迹法（Western Blot）不同，该检测完全基于微孔板进行，无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 IKKα 检测使用两种标记抗体：一种偶联供体荧光团，另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 IKKα 时，加入这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团靠近，从而产生荧光共振能量转移（FRET）信号。信号强度与样品中蛋白质的浓度直接成正比，且该检测采用无需洗涤的格式，为评估蛋白质表达提供了便利。

总 IKKα 双板检测方案

双板方案包括：先在 96 孔板中培养细胞，然后进行裂解，再将裂解物转移至 384 孔小体积检测板中，之后加入总 IKKα HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞活力和汇合度。

总 IKKα 单板检测方案

使用 HTRF 试剂检测总 IKKα 可在单个用于培养、刺激和裂解的板中进行，无需洗涤步骤。这种为高通量筛选（HTS）设计的方案可实现微型化，同时保持稳定的 HTRF 质量。

检测验证

HeLa 细胞中磷酸化 IKKα（Ser176/180）的激活检测

将 HeLa 细胞（永生化人宫颈癌细胞系）以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中，在完全培养基中培养 24 小时以使其贴壁。移除细胞培养基，在含有 10% 胎牛血清的细胞培养基中，用不同浓度的 IL1β 与固定浓度（100nM）的花萼海绵诱癌素 A 共同处理细胞 15 分钟，培养条件为 37°C、5% CO₂。处理后，移除细胞培养基，每孔加入 50µl 补充的 1X 裂解缓冲液 #1，在室温下轻轻振荡 30 分钟。细胞裂解后，取 16µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中，加入 4µL HTRF 总 IKKα 或磷酸化 IKKα（Ser176/180）检测抗体。孵育过夜后记录 HTRF 信号。

已有研究表明，包括 IL-1β 在内的细胞因子对 IKK 复合物有激活作用，并能使磷酸化 IKKα（Ser176/180）发生磷酸化。正如预期，结果显示用 IL-1β 处理后，IKKα 在 Ser176 和 Ser180 位点的磷酸化呈明显的剂量依赖性激活，而总 IKKα 蛋白的表达水平保持恒定。

利用磷酸化 IKKα（Ser176/180）和总 IKKα 在 HeLa 细胞上进行的抑制剂表征

将 HeLa 细胞以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中，在完全培养基中于 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的 5Z-7 - 氧杂泽兰醇（一种 TAK1 抑制剂）在 37°C、5% CO₂条件下处理细胞 1 小时。然后在含有 2nM IL1β 和 100nM 花萼海绵诱癌素 A 的细胞培养基中共同孵育 15 分钟，培养条件为 37°C、5% CO₂，之后用 50µL 补充的 1X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡 30 分钟裂解细胞。细胞裂解后，取 16µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中，加入 4µL HTRF 总 IKKα 或磷酸化 IKKα（Ser176/180）检测抗体。在室温下孵育过夜后记录 HTRF 信号。正如预期，该抑制剂以剂量依赖性方式降低 IKKα（Ser176/180）的磷酸化水平，而对总 IKKα 蛋白的表达水平无影响。

总 IKKα 检测的特异性验证

使用 HTRF 人总 IKKα 试剂盒在 HAP1 细胞（野生型）以及不同的 IKKα 或 IKKβ 敲除 HAP1 细胞系中评估总 IKKα 蛋白水平。预先优化细胞密度，以确保 HTRF 检测在试剂盒的动态范围内（数据未显示）。

将不同的细胞系在 96 孔板中（200,000 个细胞 / 孔）于 37°C、5% CO₂条件下培养 24 小时。然后用 50µL 补充的 1X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡 30 分钟裂解细胞，取 16µL 细胞裂解物转移到小体积白色微孔板中，再加入 4µL 预混合的检测试剂。在室温下孵育过夜后记录 HTRF 信号。

在 HAP1 IKKα 敲除细胞中，HTRF 信号与非特异性信号（虚线）相当，表明 IKKα 基因被完全沉默，而正如预期，在其他细胞系中可很好地检测到 IKKα 水平。

值得注意的是，野生型和 IKKβ 敲除细胞系中 IKKα 的表达水平相近，这表明尽管 IKKα 和 IKKβ 这两种蛋白质的序列同源性超过 50%，但 HTRF 总 IKKα 试剂盒对 IKKα 具有选择性。

细胞系目录参考（Horizon Discovery）：HAP1 野生型 #C631；HAP1 IKKα 敲除 #HZGHC000003c011；HAP1 IKKβ 敲除 #HZGHC023808c011

多种细胞模型中的总 IKKα 检测

将贴壁的人类细胞系 HeLa（宫颈癌细胞）、HAP1（慢性粒细胞白血病细胞）以及小鼠细胞系 Neuro2a（神经母细胞瘤细胞）以 200,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养板中，在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。移除细胞培养基后，用 50µL 补充的 1X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡 30 分钟裂解细胞。

将悬浮的人类细胞系 THP-1（单核细胞白血病细胞）和 MOLT-4（T 淋巴母细胞白血病细胞）以 30µL 的体积、200,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中，在 37°C、5% CO₂条件下孵育 1 小时，然后用 10µL 补充的 4X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡 30 分钟裂解细胞。

使用 HTRF 总 IKKα 试剂盒评估 IKKα 蛋白的表达水平。简而言之，将 16µL 细胞裂解物转移到小体积白色微孔板中，然后加入 4µL 预混合的 HTRF 检测试剂。在室温下孵育过夜后记录 HTRF 信号。注意，预先优化了细胞密度，以确保 HTRF 检测在试剂盒的动态范围内。

HTRF 总 IKKα 检测能有效检测各种人类细胞模型中内源性的 IKKα 蛋白，这些模型中该蛋白的表达水平各不相同。

HTRF 总 IKKA 检测与蛋白质印迹法的比较

HeLa 细胞在含完全培养基的 T175 培养瓶中于 37°C、5% CO₂条件下培养。孵育 24 小时后，用 3mL 补充的 1X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡 30 分钟裂解细胞。

用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释，取 16µL 各稀释液转移到小体积白色微孔板中，然后加入 4µL 总 IKKα 检测试剂。使用等量的裂解物进行 HTRF 与蛋白质印迹法的平行比较。

蛋白质印迹法与 HTRF 的平行比较表明，至少在这些实验条件下，HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 4 倍。

简化通路

IKKA 信号通路

NF-κB 通路参与免疫反应、细胞生长和凋亡的调控。这些通路可通过经典通路或替代通路被激活。经典通路的激活会刺激包括 TAK1 在内的不同激酶，TAK1 通过磷酸化 IKKβ（Ser177/Ser181）或 IKKα（Ser176/Ser180）亚基来激活 IκB 激酶复合物（IKK）。受刺激后，IKK 复合物会磷酸化 IκBα，使 p50-p65 能够转移到细胞核中。替代通路的激活会导致 NIK 激活，进而使 IKKα 亚基发生磷酸化。

规格

其他规格

应用：细胞信号传导
品牌：HTRF
检测方式：HTRF
兼容的裂解缓冲液：裂解缓冲液 1、裂解缓冲液 4
分子修饰：总（蛋白）
产品类别：试剂盒
样品体积：16µL
运输条件：干冰运输
靶标类别：磷蛋白
靶标物种：人
技术：时间分辨荧光共振能量转移（TR-FRET）
单位规格：500 个检测点

没有数据

货号：64KKATPEY

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