这款基于 HTRF 细胞的检测试剂盒可便捷且准确地监测磷酸化和非磷酸化 p62/SQSTM1 蛋白的表达水平。它使用与我们的磷酸化 p62/SQSTM1 试剂盒相同的缓冲液,能够从单个样本中同时分析磷酸化蛋白和总蛋白,作为自噬通路的关键检测指标。自噬是一种细胞机制,可清除异常蛋白或细胞器,在癌症、神经退行性疾病以及心血管疾病和感染性疾病中发挥作用。
p62/SQSTM1 是一种泛素结合蛋白,充当多泛素化 cargo 蛋白与自噬体之间的桥梁。p62 直接与 cargo 蛋白以及参与自噬体形成的 LC3 蛋白相互作用。最终,激活的自噬通路促进 p62 相关的泛素化蛋白 cargo 的降解。
总 p62/SQSTM1 检测可定量细胞裂解物中 p62 的表达水平。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 p62/SQSTM1 检测使用两种标记抗体,一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 p62/SQSTM1 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET 信号。其强度与样本中蛋白质的浓度直接成正比,并提供了一种在无需洗涤的检测格式中评估蛋白质表达的方法。
双板方案包括在 96 孔板中培养细胞,裂解后将裂解物转移到低体积检测板(HTRF 384-lv 或 96-lv 板)中,然后添加 HTRF 总 p62/SQSTM1 检测试剂。该方案能够监测细胞活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测总 p62/SQSTM1 可在单个用于培养、刺激和裂解的培养板中进行。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案可实现小型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。
将人 HeLa 细胞、SH-SY5Y 细胞和小鼠 Neuro2a 细胞分别以 100,000、120,000 和 50,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中。
在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时后,弃去细胞培养液,加入 50µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)。
在室温下轻轻摇晃裂解 30 分钟后,将裂解物按如下方式转移到低体积检测微孔板中:
- 16µL 裂解物用于检测磷酸化 p62/SQSTM1(S403)。
- 4µL 裂解物,随后加入 12µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)用于检测总 p62/SQSTM1。
最后,加入 4µL HTRF 磷酸化(Ser403)或总 p62/SQSTM1 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
结果显示,在本实验所评估的未处理细胞系中均检测到 p62/SQSTM1 的表达,但仅在 Neuro2A 细胞中其磷酸化水平升高。
除了证明两种检测方法与人和小鼠样本的兼容性外,这些结果还表明 p62/SQSTM1 的行为因细胞背景不同而存在差异。
将人 HeLa 细胞和 SH-SY5Y 细胞分别以 100,000 和 120,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中,并在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。
用递增浓度的巴弗洛霉素 A1(一种公认的自噬流抑制剂)孵育过夜后,移除细胞培养液,用 50µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)裂解细胞。在室温下轻轻摇晃裂解 30 分钟后,将裂解物按如下方式转移到低体积检测微孔板中:
- 16µL 裂解物用于检测磷酸化 p62/SQSTM1(S403)。
- 4µL 裂解物,随后加入 12µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)用于检测总 p62/SQSTM1。
最后,加入 4µL HTRF 磷酸化(Ser403)或总 p62/SQSTM1 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
正如预期的那样,巴弗洛霉素 A1 浓度的增加与 p62/SQSTM1 的表达及其 S403 位点磷酸化的剂量依赖性增加相关。
注意,巴弗洛霉素的半数有效浓度(EC50)约为 20nM,且在 HeLa 细胞和 SH-SY5Y 细胞中相当。
将人 HeLa 细胞以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中。孵育 24 小时后,移除细胞培养液,更换为 EBSS(一种缺乏氨基酸和维生素的培养基)或新鲜培养液,继续培养 6 小时。
随后,用 50µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)裂解细胞。在室温下轻轻摇晃裂解 30 分钟后,将裂解物按如下方式转移到低体积检测微孔板中:
- 16µL 裂解物用于检测磷酸化 p62/SQSTM1(S403)。
- 4µL 裂解物,随后加入 12µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)用于检测总 p62/SQSTM1。
最后,加入 4µL HTRF 磷酸化(Ser403)或总 p62/SQSTM1 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
正如预期的那样,氨基酸缺乏条件下总 p62/SQSTM1 水平降低,这是由自噬诱导的降解机制导致的。
将人 HeLa 细胞和 SH-SY5Y 细胞分别以 100,000 和 120,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中。
用递增浓度的自噬诱导剂 PP242 处理细胞(HeLa 细胞:6 小时;SH-SY5Y 细胞:过夜)后,移除培养液。
随后,用 50µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)裂解细胞。在室温下轻轻摇晃裂解 30 分钟后,将裂解物按如下方式转移到低体积检测微孔板中:
- 16µL 裂解物用于检测磷酸化 p62/SQSTM1(S403)。
- 4µL 裂解物,随后加入 12µL 补充的 #4 裂解缓冲液(1X)用于检测总 p62/SQSTM1。
最后,加入 4µL HTRF 磷酸化(Ser403)或总 p62/SQSTM1 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
这些结果表明,PP242 处理后 p62/SQSTM1 水平降低,这是由自噬通路诱导的降解导致的。
人 HeLa 细胞培养 2 天,直至达到 80% 汇合度。然后用 MG-132(4µM)刺激细胞过夜,之后用补充的裂解缓冲液裂解细胞,并通过离心收集可溶性上清液。
将细胞裂解物在补充的 #4 裂解缓冲液(1X)中进行系列稀释,将 16µL 裂解物转移到 HTRF 低体积检测微孔板中,然后加入 4µL HTRF 总 p62/SQSTM1 检测试剂。
蛋白质印迹法与 HTRF 的并列比较表明,至少在这些实验条件下,HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 4 倍。
蛋白质印迹法与 HTRF 的并列比较表明,HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 8 倍。
自噬是一种生理性细胞过程,能够清除错误折叠或聚集的蛋白质以及受损的细胞器(如线粒体,也称为线粒体自噬)。自噬通路在氧化应激、营养缺乏、感染(异源自噬)时被激活,或在癌症或神经退行性疾病发展过程中被激活,其依赖于关键分子,如 p62/SQSTM1、ATG 蛋白或 LC3。
p62/SQSTM1 是一种衔接蛋白,首先由 ULK1 在丝氨酸 407 位点磷酸化,然后由酪蛋白激酶 2 或 TBK1 在丝氨酸 403 位点磷酸化。Ser403 位点的磷酸化会增加其与泛素链的亲和力,从而使 p62/SQSTM1 能够结合泛素化的 cargo 蛋白。与 p62/SQSTM1 蛋白相关的泛素化蛋白或泛素包裹的线粒体被吞噬体吞噬,吞噬体内容物在与溶酶体融合后被清除。
此外,有报道称在氧化应激或氨基酸缺乏时,p62/SQSTM1 的另一个磷酸化位点 Ser349 会发生磷酸化。这种磷酸化事件会破坏 Keap1 与转录因子 Nrf2 之间的相互作用,使 Nrf2 转移到细胞核中,激活包括 p62/SQSTM1 在内的抗氧化基因的转录。同时,细胞质中的 Keap1 被 p62/SQSTM1 捕获,并通过自噬清除被降解。
除了 p62/SQSTM1 在将不需要的 cargo 转运至自噬清除过程中的作用外,其他成分在自噬过程中也至关重要。其中包括 ULK1 和 VSP34 复合物,以及由 ATG 蛋白家族和 LC3-II 组成的 conjugation 机制,它们依次参与吞噬泡的形成。吞噬泡逐渐发展为自噬体,自噬体与溶酶体融合,形成自溶酶体,其中蛋白酶或磷酸酶等酶具有活性。
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 兼容裂解缓冲液:
- 分子修饰类型:总蛋白
- 产品类别:试剂盒
- 样本体积:16µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸化蛋白
- 靶标物种:
- 技术原理:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:
- 单位规格:500 个检测点