总 NFkB 试剂盒可作为我们磷酸化 NFkB 试剂盒的归一化检测工具。NFkB(核因子 κB)在癌症研究中备受关注,也是炎症反应中的关键参与者。HTRF 磷酸化和总 NFkB 检测试剂盒的缓冲液具有兼容性,能够从一份裂解物样本中同时分析磷酸化蛋白和总蛋白的数量。
总 NFkB 检测可定量细胞裂解物中 NFkB 的表达水平。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 NFkB 检测使用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 NFkB 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样本中蛋白质的浓度直接成正比,且无需洗涤步骤即可评估蛋白质的表达水平。
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后进行裂解,再将裂解物转移至 384 孔低体积检测板,之后添加总 NFkB HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测总 NFkB 可在单个培养板中完成,该培养板同时用于细胞培养、刺激和裂解。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案支持实验微型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。
将人源和鼠源细胞在无血清培养基中以每孔 40,000 个细胞的密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。通过用 10 nM 肿瘤坏死因子 α(TNFα)或 2 nM 白细胞介素 1β(IL1β)刺激 10 分钟诱导磷酸化状态。刺激后,移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡裂解 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移至 384 孔白色微量检测板中,并加入 4 µL HTRF 总 NFkB 检测试剂。过夜孵育后记录 HTRF 信号。
培养人 HeLa 细胞 48 小时后,用 TNFα 刺激。裂解后,离心收集可溶性组分。将细胞裂解物进行系列稀释,分别通过蛋白质印迹法和 HTRF 法进行平行分析。结果表明,HTRF 总 NFkB 细胞检测比蛋白质印迹法更灵敏:使用 HTRF 总 NFkB 检测时,仅需 1,000 个细胞即可检测到最小信号,而蛋白质印迹法则需要 4,000 个细胞才能产生信号。
接种 HeLa 细胞并培养 24 小时后,暴露于不同浓度的 TNFα 中。细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移至 384 孔白色微量检测板中,并加入 4 µL 磷酸化 NFkB(Ser536)或总 NFkB 检测试剂。过夜孵育后记录 HTRF 信号。结果显示,随着 TNFα 浓度增加,NFkB 的磷酸化水平升高,而总蛋白(包括未磷酸化和磷酸化形式)的总量保持稳定。
实验表明,长时间暴露于 BAY 11-7085 会导致 NFkB 表达水平下调,表现为 HTRF 总 NFkB 信号降低。随着 BAY 浓度增加,NFkB 的磷酸化水平也下降。因此,通过磷酸化和总 NFkB 水平计算的归一化信号保持稳定。将 40,000 个 U937 细胞用不同浓度的 BAY 11-7085 处理 3 小时,同时用 10 nM TNFα 共刺激 10 分钟。细胞裂解后转移至 384 孔白色微量检测板中,分别检测 HTRF 磷酸化和总 NFkB 信号。
NFkB 是一个超家族,包含 5 个成员,由同源或异源二聚体的两个亚基组成,参与免疫反应的调控。NFkB 主要存在两种通路:经典通路涉及 p65 和 p50,由细胞因子或 TLR 激活触发;替代通路主要在淋巴细胞生成中被激活。 inactive NFkB 二聚体在细胞质中被隔离。受到刺激后,IB 蛋白发生磷酸化、泛素化并降解,从而激活 NFkB 复合体,使其转移至细胞核内。激活的 NFkB 参与介导基因表达、炎症反应、细胞存活和细胞增殖。研究发现,NFkB 通路的失调与多种自身免疫性疾病以及某些类型的癌症相关。
- 其他规格
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 裂解缓冲液兼容性:
- 分子修饰:总蛋白
- 产品类别:试剂盒
- 样本体积:16 µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸化蛋白
- 靶标物种:
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:
- 非酒精性脂肪性肝炎 / 肝纤维化(NASH/Fibrosis)
- 神经科学
- 肿瘤学与炎症
- 单位规格:500 次检测