总 SHP1 细胞检测可监测 SHP1 的表达水平,并能与我们的磷酸化 SHP1 Y564 试剂盒配合作为归一化检测。由于这些磷酸化和总 SHP1 检测具有兼容性,这两种试剂盒可在相同的裂解物上平行使用。
许多癌细胞会过度表达检查点抑制剂配体,如 PD-L1。PD-L1 与其对应的检查点抑制剂受体 PD1 结合,而 PD1 存在于 T 淋巴细胞表面。反过来,PD1-PDL1 复合物会招募并激活抑制性效应因子,如 SHP1 或 SHP2。这两种磷酸酶分别由激酶 Lck 在 Tyr564 和 Tyr542 上磷酸化,进而触发 T 细胞活化通路中涉及的信号蛋白(如 ZAP-70 或 SLP-76)的去磷酸化。最终,活化的 SHP1 和 SHP2 会参与 T 细胞的失活过程。
研究认为,通过小分子抑制剂阻止 SHP1 和 / 或 SHP2 的活化,有助于恢复针对肿瘤的免疫反应。
总 SHP1 检测可测量 SHP1 的表达水平,且不受其磷酸化状态的影响。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 SHP1 检测使用两种标记抗体,一种带有供体荧光团,另一种带有受体荧光团。这两种抗体都对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 SHP1 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET 信号。其强度与样品中蛋白质的浓度直接成正比,并提供了一种在无需洗涤的检测格式中评估蛋白质表达的方法。
双板方案包括先在 96 孔板中培养细胞,然后进行裂解,接着将裂解物转移到 384 孔小体积检测板中,之后再添加总 SHP1 HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测总 SHP1 可在单个板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现小型化,同时保持稳定的 HTRF 质量。
将人 Jurkat 悬浮细胞以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔半面积板中,在 37°C、5% CO₂条件下与不同浓度的萨拉卡替尼共同孵育 24 小时。裂解前,Jurkat 细胞与过钒酸盐(30μM)孵育 30 分钟,随后加入 10μL 4X 补充裂解缓冲液。在室温下轻轻振荡裂解 30 分钟后,将 16μL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并添加 4μL HTRF 磷酸化 SHP1(Tyr564)或总 SHP1 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
如其他地方所述,用萨拉卡替尼处理后,SHP1 Tyr564 的磷酸化受到剂量依赖性抑制,而在相同实验条件下,SHP1 的表达水平保持稳定。
将人 Jurkat 细胞系接种到 T175 培养瓶中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育。然后用过钒酸盐(30μM)处理细胞 30 分钟,之后进行裂解。
在补充裂解缓冲液中对细胞裂解物进行系列稀释,将 16μL 各稀释液转移到小体积白色微孔板中,然后添加 4μL HTRF 总 SHP1 检测试剂。使用等量的裂解物进行 HTRF 与蛋白质印迹法的平行比较。
对于 HTRF 总 SHP1 检测和蛋白质印迹法,每孔 5,000 个细胞就足以检测到信号,这表明两种方法的灵敏度相近。
SHP1(也称为非受体型酪氨酸蛋白磷酸酶 6,PTPN6)是一种主要在造血细胞中表达的酪氨酸磷酸酶,由 Lck 激活并被细胞表面受体招募。SHP2(也称为非受体型酪氨酸蛋白磷酸酶 11)在造血细胞和非造血细胞中均有广泛表达。尽管 SHP2 负向调节 T 细胞活化,但它在响应血小板衍生生长因子(PDGF)或成纤维细胞生长因子(FGF)等生长因子时,正向参与细胞外信号调节激酶(ERK)的活化。
在 T 淋巴细胞中,SHP1 和 SHP2 被免疫检查点抑制剂招募,从而参与 T 细胞受体(TCR)信号通路的抑制。SHP1 和 SHP2 与 PD1 的免疫受体酪氨酸抑制基序(ITIM)结构域相互作用,并被 Lck 激酶磷酸化和激活。活化的 SHP1 和 SHP2 磷酸酶会导致 TCR 信号通路中的关键效应因子(如 ZAP70 或 SLP76)去磷酸化,而这些效应因子是 T 细胞增殖和功能所必需的。
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 分子修饰:总蛋白
- 产品类别:试剂盒
- 样品体积:16 µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷蛋白
- 靶标物种:人
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:传染病、肿瘤学与炎症
- 单位规格:50,000 个检测点