这种基于磷酸化 ULK1 细胞的检测方法旨在监测 ULK1 的磷酸化调节情况,其中小鼠的 ULK1 磷酸化位点为丝氨酸 757(Serine 757),人类的则为丝氨酸 758(Serine 758)。这是自噬(即细胞的 “吞噬” 过程)的标志性特征。
磷酸化 ULK1(小鼠 Ser757 / 人类 Ser758)检测用于测量在小鼠 Ser757 或人类 Ser758 位点发生磷酸化的 ULK1。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。
此检测使用两种标记抗体:一种携带供体荧光团,另一种携带受体荧光团。第一种抗体经筛选可特异性结合蛋白质上的磷酸化基序,第二种抗体则能识别该蛋白质,且不受其磷酸化状态影响。蛋白质磷酸化会促使两种标记抗体形成免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。信号强度与样品中磷酸化蛋白质的浓度直接成正比,该方法无需洗涤步骤即可评估蛋白质的磷酸化状态。
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解细胞,再将裂解液转移至 384 孔小体积检测板中,最后加入磷酸化 ULK1 HTRF 检测试剂。此方案可监测细胞的活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测磷酸化 ULK1 可在单个板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解,无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现微型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。
将人胚肾 HEK293 细胞培养 2 天,直至达到 80% 汇合度。随后用补充的裂解缓冲液裂解细胞,通过离心收集可溶性上清液。将细胞裂解液在补充的裂解缓冲液中进行系列稀释,转移至 384 孔小体积白色微孔板中,最后加入 HTRF 磷酸化 ULK1 试剂盒试剂。
蛋白质印迹法与 HTRF 检测的对比结果表明,HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 4 倍。
将 MCF-7 细胞以每孔 100,000 个细胞的密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的 Torin 1 处理细胞 5 小时后,移除培养基,加入 50 µL 补充的 #4 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡 30 分钟以裂解细胞。取 16 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF 磷酸化 ULK1(Ser758)检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
将 HEK293 细胞以每孔 50,000 个细胞的密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的渥曼青霉素处理细胞 5 小时后,移除培养基,加入 50 µL 补充的 #4 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡 30 分钟以裂解细胞。取 16 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF 磷酸化 ULK1(Ser758)检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
将不同密度的 MCF-7 细胞接种到 96 孔板中,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。经过 3 小时的血清饥饿处理后,用 200 nM 胰岛素处理细胞 30 分钟。随后移除培养基,加入 50 µL 补充的 #4 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡 30 分钟以裂解细胞。取 16 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,并加入 4 µL HTRF 磷酸化 ULK1(Ser758)检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
ULK1 是一种丝氨酸 / 苏氨酸(Ser/Thr)激酶,可与 Atg13 和 FIP200 蛋白形成复合物。该复合物是自噬核心机制中最上游的组件,因此是哺乳动物细胞自噬的关键启动因子。ULK1 受关键的营养 / 能量敏感激酶 mTOR 和 AMPK 调控,这两种激酶均能磷酸化 ULK1 并直接调节其激酶活性。