概述
GTP Gi 结合测定可在膜提取物中 GPCR 受刺激时,检测受体处上游 Gi 蛋白的活性。这种基于 HTRF 的非同位素测定方法操作简便、快速,且无需洗涤。该测定适用于 GPCR 模型研究以及化合物的药理学鉴定和表征。
工作原理
GTP Gi 结合测定原理
GTP Gi 结合测定使用隐窝标记的 GTP 类似物(供体)和 d2 标记的抗 Gi 抗体(受体)。GTP 类似物特异性结合到活性 G 蛋白的 GTP 结合口袋中,而 d2 标记的抗体则特异性针对 G 蛋白的 Gαi 亚基。在两种检测试剂存在的情况下,GPCR 被激活会使供体和受体靠近,从而触发 FRET 信号,其强度与样品中活性 Gi 蛋白的浓度成正比。GTPγS 是一种不可水解的 GTP 类似物,用于将供体从 GTP 结合口袋中置换出来并消除 FRET,以确定测定的非特异性信号并确保其准确性。
GTP Gi 结合板测定方案
GTP Gi 结合测定采用微型化形式,最终体积为 20μl,其特点是简化的 4 步试剂添加方案,依次添加刺激物 / 化合物、激动剂、检测试剂和膜。根据生物模型的不同,在室温下孵育 3 小时或过夜后读取平板数据。无需洗涤步骤。
该方案使用先前为目标生物模型确定的优化条件(最佳膜量 / 孔,以及补充了最佳浓度的 MgCl₂和 GDP 的刺激缓冲液 #3)。优化程序和建议在相关指南中给出。
测定验证
CHO-δ 阿片受体膜提取物中的药理学反应
使用该膜模型先前优化的条件进行测定:刺激缓冲液 #3 补充有 0.5μM 的 GDP、50mM 的 MgCl₂。测定中每孔使用 5μg 膜。SNC-162 的剂量 - 反应曲线拟合显示 EC50 为 6.5nM,与已发表的值一致。
GTP 结合测定的优化步骤要求
在 CHO-DOR 膜模型中进行的一项案例研究,研究了刺激缓冲液中 MgCl₂和 GDP 浓度优化与否的情况。将 5μg 膜在有或没有 SNC-162 激动剂(1μM)的情况下孵育。在室温下过夜孵育后读取平板数据。
未经优化时,该测定存在严重偏差,GPCR 基础活性和激动剂诱导活性之间的信号没有差异。优化步骤显著降低了基础活性信号,从而突出了激动剂诱导的信号,信噪比(S/B)达到 2.8。优化建议和程序在试剂盒相关指南的优化部分有详细描述。
GTP 结合测定的膜量优化步骤
每孔的最佳膜量可能因膜模型而异。额外的优化步骤包含三种条件(2.5、5 和 10μg / 孔),可用于确定最佳膜量。此处介绍两个案例研究:
- CHO-DOR 膜模型(Gi 偶联受体)。测定在 50mM MgCl₂、0.5μM GDP 存在下进行,用 10μM 的 SNC-162 激动剂刺激。
- HEK293-NTS1 膜模型(主要为 Gq 偶联受体,次要为 Gi 偶联)。测定在 50mM MgCl₂、不添加 GDP 的情况下进行,用 10μM 的神经降压素激动剂刺激。
图表显示了在没有(基础)或有激动剂(受刺激)的情况下获得的信号。每种条件下均给出信噪比(S/B)。如此处所示,每孔的膜量是药理学信噪比优化的关键参数。对于这两种模型,5μg 膜 / 孔是合适的。该优化步骤可能是提高测定信噪比或选择使用更低膜量(DOR 为 2.5μg / 孔)的测定条件的决定性因素。
简化途径
GTP 在 GPCR 信号通路中的作用
在非活性状态下,异源三聚体 G 蛋白在其 Ga 亚基的结合口袋中结合 GDP。当 GPCR 被激动剂刺激时,与受体偶联的 G 蛋白发生构象变化,使 Ga 亚基释放结合的 GDP 并替换为 GTP。这种核苷酸交换使 Ga 亚基完全激活,它与 Gb/Gg 二聚体分离,并根据其亚型(Gai、Gas、Gaq 等)对腺苷酸环化酶(AC)和磷脂酶 C(PLC)执行抑制或刺激功能。
接下来的信号转导步骤具有 GPCR 特异性,并调动不同的磷酸蛋白和通路。随着时间的推移,与 Ga 结合的 GTP 发生水解,使 Ga 蛋白回到非活性状态。
规格
其他规格
应用
第二信使检测
品牌
HTRF
检测方式
HTRF
产品类别
试剂盒
样品体积
10μL
运输条件
干冰运输
目标类别
GPCR
技术
TR-FRET
治疗领域
心血管疾病
传染病
炎症
代谢 / 糖尿病
非酒精性脂肪性肝炎 / 纤维化
神经科学
肿瘤学与炎症
罕见病
单位规格
500 个测定点