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切割型 PARP(Asp214)试剂盒可特异性定量检测人、鼠、猴体内 PARP-1 的 89 kDa 大片段(内源性水平)。PARP-1 是半胱天冬酶 3(caspase 3)和半胱天冬酶 7(caspase 7)下游的核心分子,而这两种半胱天冬酶可被外源性和内源性凋亡通路激活,因此切割型 PARP-1 是细胞凋亡的关键标志物。凋亡调控异常与多种疾病相关:凋亡不足可导致癌症、自身免疫病、持续性感染等;凋亡过度则可能引发神经退行性疾病和缺血性损伤。
切割型 PARP 检测采用夹心免疫分析技术,使用两种特异性抗 PARP-1 p85 片段单克隆抗体:一种标记铕穴状化合物(Eu³⁺-Cryptate,供体),另一种标记 d2(受体)。供体与受体的近距离接触产生荧光 TR-FRET 信号,信号强度与凋亡细胞数量成正比。该方案优化适用于 384 孔板格式,可灵活实现微型化或扩大化操作;细胞裂解后,通过该试剂盒可半定量检测切割型 PARP-1 p85 片段。(标注:biomarkers-how-it-works-assay-principle-cleaved-parp-1 为图表标识,对应 “切割型 PARP 检测原理”)
采用双板实验方案,灵活性更高:细胞在 96 孔培养板中接种并处理,检测时将裂解液转移至 384 孔小体积(sv)检测板,加入检测试剂即可。检测试剂可预先混合,单次加样直接检测,全程无需洗涤步骤;同时可在合适的细胞培养板中监测细胞活力与汇合度。(标注:biomarkers-how-it-works-assay-protocol-cleaved-parp-1 为图表标识,对应 “切割型 PARP 检测流程”)
Jurkat 细胞在 T175 培养瓶中 37°C、5% CO₂条件下培养,经星形孢菌素(staurosporine)刺激 4 小时后离心,移除培养基,用 3 mL 补充型裂解缓冲液室温裂解 30 分钟,离心 10 分钟收集可溶性组分。将细胞裂解液用补充型裂解缓冲液系列稀释,取 16 µL 各稀释液分别进行 Western Blot 和 HTRF 平行检测。结果显示,HTRF 检测仅需 3125 个细胞即可获得最低检测信号,而 Western Blot 需 12500 个细胞,HTRF 检测的灵敏度优于 Western Blot。(标注:assay-validation-parp-cleaved-asp214-1 为图表标识,对应 “与 Western Blot 对比结果”)
将 50,000 个人宫颈癌细胞(HeLa)接种于 96 孔板,37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时,用不同浓度的星形孢菌素处理 4 小时后移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液室温温和振荡裂解 30 分钟。取 16 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 切割型 PARP(Asp214)检测试剂,孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-parp-cleaved-asp214-2 为图表标识,对应 “HeLa 细胞凋亡检测结果”)
将 50,000 个小鼠成肌细胞(C2C12)接种于 96 孔板,37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时,用不同浓度的星形孢菌素处理 4 小时后移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液室温温和振荡裂解 30 分钟。取 16 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 切割型 PARP(Asp214)检测试剂,孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-parp-cleaved-asp214-3 为图表标识,对应 “C2C12 细胞凋亡检测结果”)
效应型前半胱天冬酶 3(pro-caspase 3)可在 Asp214 位点切割 PARP,引发凋亡,其激活主要通过两条通路:
在死亡配体刺激或细胞损伤作用下,外源性或内源性凋亡通路被激活,参与 DNA 损伤修复的核酶 PARP-1(116 kDa)被活化的半胱天冬酶 3 和 7 在 Asp214 与 Gly215 之间切割,使 N 端 DNA 结合域 p25(24 kDa)与 C 端催化域 p85(89 kDa)分离,导致酶失活,最终引发 DNA 片段化和细胞凋亡。因此,切割型 PARP-1 被视为凋亡的核心标志物。(标注:biomarkers-tab4-cleaved-parp-1-pathway-64parpeg-64parpeh.svg 为图表标识,对应 “切割型 PARP 简化通路”)