品牌: Revvity
这款 HTRF 细胞水平检测试剂盒可便捷、准确地检测 Tyr15 位点磷酸化的周期蛋白依赖性激酶 1(Phospho-CDK1,Tyr15)。周期蛋白依赖性激酶 1(CDK1)是协调哺乳动物细胞周期进程的 CDK 亚家族成员(还包括 CDK2、CDK4 和 CDK6)。CDK1 是 M 期促进因子(一种蛋白激酶)的催化亚基,可诱导细胞进入有丝分裂。它通过与多种间期周期蛋白(周期蛋白 A、周期蛋白 B)结合,推动 G2-M 期转换,并调控 G1 期进程及 G1-S 期转换。Wee1 和 Myt1 蛋白激酶可催化 CDK1 的 Thr14 和 Tyr15 位点磷酸化,从而抑制 CDK1 活性;而 cdc25 磷酸酶则负责去除这两个位点的磷酸基团,进而激活 CDK1。Tyr15 位点的 CDK1 抑制性磷酸化,对维持基因组完整性、防止 S 期 DNA 损伤至关重要。因此,Wee1/Cdc25A 轴是极具吸引力的癌症治疗靶点,可能为致敏 CDK1 过度活跃的癌细胞提供独特思路。
该检测专门针对 Tyr15 位点磷酸化的 CDK1 进行定量。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,它完全基于微孔板操作,无需凝胶、电泳或转膜步骤。检测采用两种抗体:一种标记供体荧光团,另一种标记受体荧光团。第一种抗体特异性结合蛋白上的磷酸化基序,第二种抗体则不依赖蛋白的磷酸化状态识别目标蛋白。蛋白磷酸化会促使两种标记抗体形成免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团近距离接触,进而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。信号强度与样本中磷酸化蛋白的浓度直接成正比,且该检测采用免洗涤格式,可便捷评估蛋白的磷酸化状态。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,磷酸化 CDK1(Tyr15)检测原理相关图示)
双板方案流程如下:先在 96 孔板中培养细胞,裂解后将裂解液转移至 384 孔低体积检测板,再加入磷酸化 CDK1(Tyr15)HTRF 检测试剂。该方案可监测细胞的活力和融合度。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,磷酸化 CDK1(Tyr15)双板检测方案相关图示)
使用 HTRF 试剂检测磷酸化 CDK1(Tyr15)可在单个微孔板中完成,该板可同时用于细胞培养、刺激处理和裂解。无需洗涤步骤,此方案专为高通量筛选(HTS)设计,可实现实验微型化,同时保持稳定可靠的 HTRF 检测质量。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,磷酸化 CDK1(Tyr15)单板检测方案相关图示)
将 HeLa 细胞接种到 96 孔板(每孔 50,000 个细胞),培养 6 小时后,用不同浓度的羟基脲(单链断裂诱导剂)过夜处理。细胞裂解后,取 16 微升裂解液转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 微升 HTRF 磷酸化 CDK1(Tyr15)或总 CDK1 检测抗体,孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果符合预期:羟基脲以剂量依赖性方式诱导 Tyr15 位点的 CDK1 磷酸化水平升高,而蛋白表达水平未受该处理影响。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,羟基脲调控相关检测验证图示)
将 HeLa 细胞接种到 96 孔板(每孔 50,000 个细胞),培养 24 小时后,用 Wee1 激酶抑制剂 Adavosertib 和 PD0166285 处理 2 小时。细胞裂解后,取 16 微升裂解液转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 微升 HTRF 磷酸化 CDK1(Tyr15)或总 CDK1 检测抗体,孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果符合预期:两种 Wee1 激酶抑制剂均以剂量依赖性方式降低 Tyr15 位点的 CDK1 磷酸化水平,而蛋白表达水平未受这些处理影响。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,Wee1/Myt1 抑制剂调控相关检测验证图示)
将 HeLa 细胞接种到 96 孔板(每孔 5,000 个细胞),培养 24 小时后,转染针对 CDK1、CDK2、CDK3、CDK4、CDK5 或 CDK6 的特异性 siRNA,同时设置阴性对照 siRNA。孵育 48 小时后裂解细胞,取 16 微升裂解液转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 微升 HTRF 磷酸化 CDK1(Tyr15)检测抗体,孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果显示:与转染阴性对照 siRNA 的细胞相比,转染 CDK1 siRNA 的细胞信号下降 68%;而敲低 CDK2、CDK3、CDK4、CDK5 或 CDK6 均未导致信号下降,表明该 HTRF 检测对 CDK1 磷酸化具有特异性,不会与其他细胞周期 CDK 家族成员发生交叉反应。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,siRNA 敲低特异性验证相关图示)
将贴壁细胞(人源 HeLa、MCF7,鼠源 Neuro 2A)或悬浮细胞(如人源 THP1)以每孔 50,000 个细胞的密度接种到 96 孔板,培养 24 小时后,用添加补剂的裂解缓冲液裂解细胞。取 16 微升裂解液转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 微升 HTRF 磷酸化 CDK1(Tyr15)检测试剂,孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果显示:该 HTRF 检测可在表达不同水平目标蛋白的多种细胞模型中,有效检测到磷酸化 CDK1(Tyr15)。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,不同细胞系检测相关图示)
将 HeLa 细胞接种到 T175 培养瓶,在完全培养基中于 37°C、5% 二氧化碳条件下培养 48 小时。加入 3 毫升添加补剂的 1 号裂解缓冲液(1X),室温温和振荡 30 分钟裂解细胞。用添加补剂的裂解缓冲液对细胞裂解液进行系列稀释,取 16 微升各稀释液转移至低体积白色微孔板,加入 4 微升 HTRF 磷酸化 CDK1(Tyr15)检测试剂。同时取等量裂解液进行 Western Blot 检测,进行平行对比。结果显示:使用 HTRF 检测时,每孔仅需 1250 个细胞即可检测到显著信号;而 Western Blot 需 10,000 个细胞才能获得最低化学发光信号。因此,在该实验条件下,HTRF 检测的灵敏度是 Western Blot 的 8 倍。(图示:human-mouse-phospho-CDK1-Tyr15-detection-kit,与 Western Blot 对比相关图示)
CDK1(周期蛋白依赖性激酶 1)是协调哺乳动物细胞周期进程的 CDK 亚家族成员(还包括 CDK2、CDK4 和 CDK6)。生长因子等有丝分裂信号通过诱导周期蛋白 D 合成,触发细胞进入细胞周期 G1 期,形成活性 CDK4/6 - 周期蛋白 D 复合物。CDK4 和 CDK6 使视网膜母细胞瘤蛋白(RB)发生单磷酸化,此时 RB 仍与转录因子 E2F 结合,但部分基因(如周期蛋白 E)可被转录。在 G1 期晚期和 S 期早期,周期蛋白 E 与 CDK2 结合并激活 CDK2,进而磷酸化 RB 上的额外位点,导致 RB 完全失活。由此诱导 S 期进展所需的 E2F 应答基因(如周期蛋白 A)表达,周期蛋白 A 随后与 CDK2 结合形成周期蛋白 A/CDK2 复合物。激活的 CDK2 最终磷酸化 Cdc25B 和 Cdc25C 磷酸酶,这些磷酸酶进而激活 CDK1,为细胞分裂周期中 G2 期和 M 期的进展(中心体成熟与分离、染色体浓缩、核膜破裂后进入有丝分裂)提供支持。(图示:phospho-pathway-Phospho-CDK1-y15.svg,磷酸化 CDK1 信号通路相关图示)