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当前位置:首页 > 产品中心 > Revvity 均相检测试剂 > Phosphoproteins > HTRF (H) ADAR1 TOTAL KIT - 50K PTS

概述

ADAR1 是由两个 ADAR 基因编码的酶之一。它结合双链 RNA(dsRNA),并将其中的腺苷脱氨基转化为肌苷(次黄嘌呤)。ADAR 蛋白在转录后发挥作用,改变 RNA 的核苷酸组成。它们所催化的脱氨基作用会干扰正常的 A:U 配对,使 RNA 不稳定。 ADAR1 和 ADAR2 的调控失衡与多种癌症的发生和发展相关,如胶质母细胞瘤、黑色素瘤或急性白血病。除了在肿瘤发生中的作用,ADAR 酶还被怀疑会加重某些感染性疾病(如艾滋病和麻疹),以及一些精神疾病(如抑郁症、癫痫和精神分裂症)。工作原理

总 ATG16L1 检测原理 HTRF 总 ATG16L1 检测可定量细胞裂解物中 ATG16L1 的表达水平。与蛋白质印迹法不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 ATG16L1 检测使用两种标记抗体,一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的不同表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 ATG16L1 时,加入这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样品中蛋白质的浓度直接成正比,并且提供了一种在无需洗涤的检测格式中评估蛋白质表达的方法。 总 ATG16L1 双板检测方案 双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解细胞,再将裂解物转移到 384 孔小体积检测板中,之后添加总 ATG16L1 HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。 总 ATG16L1 单板检测方案 使用 HTRF 试剂检测总 ATG16L1 可在单个板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现小型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。检测验证

siRNA 处理的 HepG2 细胞中总 ADAR1 检测的验证 将 HepG2 细胞以不同的细胞密度接种在 96 孔板中,每孔加入 80µl 完全培养基,在 37°C、5% CO₂ 条件下过夜培养。培养后,通过添加 20µl Lipofectamine® RNAiMax/ADAR1 特异性 siRNA 混合物处理细胞,然后在 37°C、5% CO₂ 条件下孵育 24 小时和 48 小时。对于未处理的细胞,加入 20µl OptMEM 培养基代替 siRNA 混合物。孵育后,用 50µl 补充的 1X 裂解缓冲液 #1 在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟,将 16µl 裂解物转移到小体积白色微孔板中,然后加入 2µl HTRF d2 检测试剂和 2µl HTRF Eu-K 检测试剂。过夜孵育后记录 HTRF 信号。规格

其他规格 应用领域:细胞信号传导 品牌:HTRF 检测方式:HTRF 裂解缓冲液兼容性: - 裂解缓冲液 1 - 裂解缓冲液 2 - 裂解缓冲液 3 分子修饰:总蛋白 产品类别:试剂盒 样品体积:16 µL 运输条件:干冰运输 目标类别:磷酸蛋白 目标物种:人 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET) 单位规格:500 个检测点

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将小鼠神经母细胞瘤细胞系 Neuro-2a 以每孔 100,000 个细胞的密度,用完全培养基接种到 96 孔培养处理板中,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育过夜。用浓度递增的普拉替尼(Pralsetinib)处理细胞 2 小时,在处理结束前 30 分钟加入 100 微摩尔过钒酸盐。加入 50 微升补充后的 4 号裂解缓冲液,在室温下轻柔振荡裂解 30 分钟。检测阶段,取 16 微升细胞裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4 微升均相时间分辨荧光 RET 磷酸化(泛特异性)或 RET 总蛋白检测试剂。孵育过夜后,记录均相时间分辨荧光信号。


结果符合预期:RET 激酶抑制剂普拉替尼以剂量依赖性方式降低 RET 磷酸化水平,但对 RET 受体的表达水平无影响。


assay-validation-ret-total-3(图示:RET 总蛋白检测验证 3)

人神经母细胞瘤 SH-SY5Y 细胞中 RET 磷酸化的抑制

将人神经母细胞瘤细胞系 SH-SY5Y 以每孔 100,000 个细胞的密度,用完全培养基接种到 96 孔培养处理板中,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育过夜。用浓度递增的普拉替尼和塞普替尼(Selpercatinib)处理细胞 2 小时,在处理结束前 30 分钟加入 100 微摩尔过钒酸盐。加入 50 微升补充后的 4 号裂解缓冲液,在室温下轻柔振荡裂解 30 分钟。检测阶段,取 16 微升细胞裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4 微升均相时间分辨荧光 RET 磷酸化(泛特异性)或 RET 总蛋白检测试剂。孵育过夜后,记录均相时间分辨荧光信号。


结果符合预期:两种 RET 激酶抑制剂均以剂量依赖性方式降低 RET 磷酸化水平,但对 RET 受体的表达水平无影响。


assay-validation-ret-total-4(图示:RET 总蛋白检测验证 4)
assay-validation-ret-total-5(图示:RET 总蛋白检测验证 5)

人肺腺癌细胞系 LC-2/ad 中 RET 磷酸化的抑制

将人肺腺癌细胞系 LC-2/ad 以每孔 50,000 个细胞的密度,用完全培养基接种到 96 孔培养处理板中,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育过夜。用浓度递增的普拉替尼处理细胞 2 小时,在处理结束前 30 分钟加入 100 微摩尔过钒酸盐。加入 50 微升补充后的 4 号裂解缓冲液,在室温下轻柔振荡裂解 30 分钟。检测阶段,取 16 微升细胞裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4 微升均相时间分辨荧光 RET 磷酸化(泛特异性)或 RET 总蛋白检测试剂。孵育过夜后,记录均相时间分辨荧光信号。


结果符合预期:RET 激酶抑制剂普拉替尼以剂量依赖性方式降低 RET 磷酸化水平,但对 RET 受体的表达水平无显著影响。


assay-validation-ret-total-6(图示:RET 总蛋白检测验证 6)

RET 总蛋白均相时间分辨荧光检测与蛋白质印迹法的比较

将 SH-SY5Y 细胞在 T175 培养瓶中用完全培养基培养 48 小时,培养条件为 37°C、5% 二氧化碳。用 100 微摩尔过钒酸盐处理细胞 30 分钟,随后加入 3 毫升补充后的 4 号裂解缓冲液,在室温下轻柔振荡裂解 30 分钟。


用补充后的裂解缓冲液对细胞裂解液进行系列稀释,取 16 微升各稀释度裂解液转移至小体积白色微孔板,加入 4 微升 RET 总蛋白均相时间分辨荧光检测试剂。取等量裂解液用于均相时间分辨荧光检测与蛋白质印迹法的平行对比。


结果显示:使用 RET 总蛋白均相时间分辨荧光检测时,每孔 3,400 个细胞即可检测到显著信号;而使用蛋白质印迹法时,需每孔 27,000 个细胞才能获得最低化学发光信号。因此,在该实验条件下,RET 总蛋白均相时间分辨荧光检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 8 倍。


assay-validation-ret-total-7(图示:RET 总蛋白检测与蛋白质印迹法比较验证)


简化通路

RET 信号通路

RET 可被胶质细胞源性神经营养因子家族配体(GFL)激活,该家族配体包括胶质细胞源性神经营养因子(GDNF)、神经营养素(NRTN)、肌萎缩相关蛋白(ARTN)和 Persephin(PSPN)。配体与 GDNF 家族受体 α 共受体(GFRα1/2/3/4)结合后,会触发其与 RET 形成复合物,进而导致 RET 发生二聚化,并在细胞内多个酪氨酸残基上发生自身磷酸化。磷酸化的酪氨酸残基可作为多种衔接蛋白的结合位点,这些衔接蛋白会激活下游信号通路(如 MAPK、PI3K/AKT、STAT3 等),而这些通路对于细胞存活、分化、增殖和迁移至关重要。


phospho-pathway-ret-total(图示:RET 总蛋白相关信号通路)


规格参数


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