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当前位置:首页 > 产品中心 > Revvity 均相检测试剂 > Phosphoproteins > HTRF STING P-S365 (M) KIT - 10K PTS

概述


这款基于 HTRF 的细胞检测试剂盒可便捷、准确地定量小鼠丝氨酸 365(Ser365)位点磷酸化的 STING。在病原体感染后,双链 DNA(dsDNA)与胞质传感器 cGAS 结合,随后 STING 蛋白被 TBK1 磷酸化。这使其能够与 IRF3 结合,进而诱导 1 型干扰素的产生及其他免疫应答。之后,STING 通路通过自噬相关的 STING 降解过程被关闭。


工作原理

小鼠磷酸化 STING(Ser365)检测原理

小鼠磷酸化 STING(Ser365)检测用于测定 Ser365 位点磷酸化的小鼠 STING。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。小鼠磷酸化 STING(Ser365)检测使用两种标记抗体:一种标记供体荧光团,另一种标记受体荧光团。第一种抗体经筛选可特异性结合蛋白上的磷酸化基序,第二种抗体则能独立于蛋白质的磷酸化状态识别该蛋白。蛋白质磷酸化会促使两种标记抗体形成免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。信号强度与样品中磷酸化蛋白的浓度直接成正比,且可在无需洗涤的检测形式下评估蛋白质的磷酸化状态。


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小鼠磷酸化 STING(Ser365)双板检测方案

双板方案的流程为:先在 96 孔板中培养细胞,裂解后将裂解物转移至低体积检测板(HTRF 384 孔低体积板或 96 孔低体积板均可),再加入 HTRF 小鼠磷酸化 STING(Ser365)检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。


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小鼠磷酸化 STING(Ser365)单板检测方案

使用 HTRF 试剂检测小鼠磷酸化 STING(Ser365)可在单个用于培养、刺激和裂解的微孔板中进行,无需洗涤步骤。这种专为高通量筛选(HTS)设计的方案支持实验微型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。


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检测验证

DMXAA 诱导 RAW 264.7 和 NIH3T3 细胞中鼠源 STING 的磷酸化

将 RAW264.7 细胞和 NIH3T3 细胞以 50 µL 的体积接种到 96 孔板中(分别为 200,000 个细胞 / 孔和 100,000 个细胞 / 孔),使用完全培养基培养并过夜孵育。用不同浓度的小鼠特异性配体 DMXAA(50 µL)刺激细胞 1 小时。处理后,加入 50 µL 补充的 4 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 磷酸化鼠源 STING 或总鼠源 STING 检测抗体。最后,在室温下孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。DMXAA 可显著激活 STING 通路,使 RAW264.7 细胞和 NIH3T3 细胞中 STING 的磷酸化水平分别提高 8 倍和 6 倍。


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ADU-S100 诱导 RAW 264.7 和 NIH3T3 细胞中鼠源 STING 的磷酸化

将 RAW264.7 细胞和 NIH3T3 细胞以 50 µL 的体积接种到 96 孔板中(分别为 200,000 个细胞 / 孔和 100,000 个细胞 / 孔),使用完全培养基培养并过夜孵育。用不同浓度的环二腺苷酸(c-di-AMP)类似物 ADU-S100(50 µL)刺激细胞 1 小时。处理后,加入 50 µL 补充的 4 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 磷酸化鼠源 STING 或总鼠源 STING 检测抗体。最后,在室温下孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。ADU-S100 可显著激活 STING 通路,使 RAW264.7 细胞和 NIH3T3 细胞中 STING 的磷酸化水平分别提高 9 倍和 5 倍。诱导的 STING 磷酸化伴随其表达水平的下调,这与自噬介导的降解过程一致。


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3’3’- 环鸟苷酸 - 腺苷酸(3’3’cGAMP)诱导 RAW264.7 细胞中鼠源 STING 的磷酸化

将 RAW264.7 细胞以 50 µL 的体积接种到 96 孔板中(200,000 个细胞 / 孔),使用完全培养基培养并过夜孵育。用不同浓度的细菌环二核苷酸配体 3’3’cGAMP(50 µL)刺激细胞 1 小时。处理后,加入 50 µL 补充的 4 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 磷酸化鼠源 STING 或总鼠源 STING 检测抗体。最后,在室温下孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。3’3’cGAMP 可显著激活 STING 通路,使 STING 的磷酸化水平提高 5 倍。


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2’3’- 环鸟苷酸 - 腺苷酸(2’3’cGAMP)诱导 RAW264.7 细胞中鼠源 STING 的磷酸化

将 RAW264.7 细胞以 50 µL 的体积接种到 96 孔板中(200,000 个细胞 / 孔),使用完全培养基培养并过夜孵育。用不同浓度的非经典环鸟苷酸 - 腺苷酸 2’3’cGAMP(50 µL)刺激细胞 1 小时。处理后,加入 50 µL 补充的 4 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移至 384 孔低体积白色微孔板,加入 4 µL HTRF 磷酸化鼠源 STING 或总鼠源 STING 检测抗体。最后,在室温下孵育 2 小时后记录 HTRF 信号。3’3’cGAMP 可显著激活 STING 通路,使 STING 的磷酸化水平提高 4 倍。诱导的 STING 磷酸化伴随其表达水平的下调,这与自噬介导的降解过程一致,而在此条件下 α- 微管蛋白(alpha-tubulin)的水平保持稳定。


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HTRF 鼠源磷酸化 STING 细胞检测与蛋白质印迹法的比较

将 RAW264.7 细胞系接种到 T175 培养瓶中,使用完全培养基培养,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 2 天。随后用 100 µM DMXAA 刺激细胞 1 小时,加入 3 mL 补充的 4 号裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。离心 10 分钟后收集可溶性上清液。使用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,取 16 µL 各稀释液转移至低体积白色微孔板,然后加入 4 µL HTRF 鼠源磷酸化 STING 检测试剂。取等量裂解物通过 HTRF 检测与蛋白质印迹法进行平行对比。


蛋白质印迹法与 HTRF 的平行对比表明,在该实验条件下两种技术的灵敏度相同。


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简化通路

STING 简化通路

STING(干扰素基因刺激蛋白)是一种定位于内质网的胞质同源二聚体蛋白,在先天免疫中发挥关键作用。当病原体感染或凋亡过程中线粒体收缩时,游离的双链 DNA 结合并激活 DNA 传感器 —— 环 GMP-AMP 合酶(cGAS)。激活的 cGAS 会催化生成 2’-3’环鸟苷酸 - 腺苷酸(2’-3’cGAMP)这一环状二核苷酸,后者继而与 STING 蛋白结合。随后,磷酸化的 STING 与 TANK 结合激酶 1(TBK1)相互作用,招募并激活干扰素调节因子 3(IRF3)二聚体。IRF3 二聚体进入细胞核后,启动编码干扰素 -α/β(IFN-α/β)的基因转录。此外,STING 通路还调控 NF-κB 依赖性炎症细胞因子的表达。作为负反馈调节,DNA 刺激的 cGAS-STING-TBK1 通路还会通过 p62 SQSTM1 相关的自噬触发 STING 蛋白降解,从而关闭干扰素 β(IFNβ)的产生。


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规格参数


其他规格


  • 应用领域:细胞信号传导
  • 品牌:HTRF
  • 检测方式:HTRF
  • 兼容裂解缓冲液:4 号裂解缓冲液
  • 分子修饰类型:磷酸化
  • 产品类别:试剂盒
  • 样品体积:16 µL
  • 运输条件:干冰运输
  • 靶标类别:磷酸化蛋白
  • 靶标物种:小鼠
  • 技术原理:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
  • 单位规格:10,000 个检测点


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