磷酸化 c-Src(Tyr419)检测(Phospho-c-Src (Tyr419) Assay)旨在监测 c-Src 蛋白的表达水平及其在 Tyr419 位点的自磷酸化水平 —— 该位点的自磷酸化是 c-Src 激活的标志之一,广泛应用于癌症研究领域。
c-Src 属于 Src 激酶家族,与该家族其他 10 个成员具有高度的序列同源性。作为一种膜相关非受体酪氨酸激酶,其 Tyr419 位点的自磷酸化意味着蛋白完全激活。在多种人类癌症中,c-Src 激酶存在过表达且活性显著升高的现象。
磷酸化 c-Src Tyr (419) 检测可定量分析 c-Src 在 419 位酪氨酸(Tyr419)的磷酸化水平。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测为全板基检测,无需使用凝胶、进行电泳或转膜操作。
该检测采用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。其中,第一种抗体可特异性结合蛋白上的磷酸化基序,第二种抗体则能不依赖蛋白磷酸化状态识别目标蛋白。当蛋白发生磷酸化时,会形成由两种标记抗体共同参与的免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团近距离接触,进而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。该信号强度与样本中磷酸化蛋白的浓度直接成正比,可在免洗涤检测模式下实现对蛋白磷酸化状态的评估。
(图示标注:phospho-how-it-works-phospho-c-src-tyr149-assay-principle.svg,即 “磷酸化 c-Src Tyr (419) 检测原理示意图”)
双板检测方案的流程为:先在 96 孔板中培养细胞,随后进行细胞裂解,再将裂解液转移至 384 孔小体积检测板,最后加入磷酸化 c-Src Tyr (419) HTRF 检测试剂。该方案可实现对细胞活力及汇合度的监测。
(图示标注:phospho-how-it-works-phospho-c-src-tyr149-2-plate-assay-protocol.svg,即 “磷酸化 c-Src Tyr (419) 双板检测方案流程示意图”)
使用 HTRF 试剂检测磷酸化 c-Src Tyr (419) 时,可在单个培养板中完成所有操作 —— 该培养板可同时用于细胞培养、刺激处理及裂解,无需洗涤步骤。此高通量筛选(HTS)专用方案可在实现实验微型化的同时,保持稳定可靠的 HTRF 检测质量。
(图示标注:phospho-how-it-works-phospho-c-src-tyr149-2-plate-assay-protocol.svg,即 “磷酸化 c-Src Tyr (419) 单板检测方案流程示意图”)
将人 HEK293 胚胎肾细胞接种并培养 24 小时,随后用 c-Src siRNA(小干扰 RNA)或阴性对照 siRNA 转染细胞,再用浓度递增的过氧化氢(H₂O₂)处理细胞,之后移除培养基并裂解细胞。将裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入试剂盒检测试剂。
结果显示:与转染阴性对照 siRNA 的细胞相比,转染 c-Src siRNA 的细胞的 HTRF 信号显著下降(约 75%),这表明两种检测试剂盒均对 c-Src 具有特异性,且不会与其他 Src 家族成员发生交叉反应。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-1.svg,即 “利用 siRNA 在 HEK293 细胞中验证 c-Src HTRF 检测特异性的结果图”)
将人 A431 癌细胞接种到 T175 培养瓶中培养,直至细胞汇合度达到 80%。细胞裂解后,通过离心收集可溶性上清液,用补充型裂解缓冲液进行系列稀释,再将稀释后的裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,最后加入 HTRF 磷酸化或总蛋白检测试剂。
取等量裂解液进行蛋白质印迹实验,与 HTRF 检测结果进行平行对比。结果显示:磷酸化 c-Src 的 HTRF 检测灵敏度是 Western Blot 的 32 倍,而总 c-Src 的 HTRF 检测灵敏度是 Western Blot 的 8 倍。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-2.png,即 “A431 细胞中磷酸化 c-Src HTRF 检测与 Western Blot 检测对比结果图”)
将 HEK293 细胞以 1×10⁵个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% 二氧化碳(CO₂)条件下孵育 24 小时。先用浓度递增的博舒替尼处理细胞 30 分钟,再用 20 毫摩尔(mM)的 H₂O₂刺激细胞 10 分钟,之后移除培养基,用 50 微升(µL)3 号补充型裂解缓冲液在室温下轻柔振荡裂解细胞 30 分钟。
取 16 微升裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4 微升 HTRF 磷酸化或总 c-Src 检测试剂,孵育 4 小时后记录 HTRF 信号。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-3.svg,即 “博舒替尼抑制 HEK293 细胞 c-Src 活性的实验结果图”)
将 A431 细胞以 1×10⁵个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育 24 小时。用浓度递增的 H₂O₂处理细胞 10 分钟后,移除培养基,用 50 微升 3 号补充型裂解缓冲液在室温下轻柔振荡裂解细胞 30 分钟。
取 16 微升裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4 微升 HTRF 磷酸化或总 c-Src 检测试剂,孵育 4 小时后记录 HTRF 信号。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-4.svg,即 “H₂O₂激活 A431 细胞 c-Src 的实验结果图”)
在 96 孔培养板中接种经培养处理的人 HepG2 肝细胞癌细胞、人 HeLa 宫颈癌细胞和人 MCF-7 乳腺癌细胞。孵育后,用 50 微升 3 号补充型裂解缓冲液在室温下轻柔振荡裂解细胞 30 分钟。
取 16 微升裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4 微升 HTRF 磷酸化或总 c-Src 检测试剂,孵育 4 小时后记录 HTRF 信号。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-5.svg,即 “多种人类癌细胞系中 c-Src 检测的验证结果图”)
将小鼠 NIH/3T3 胚胎成纤维细胞以不同密度接种到 96 孔板中,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育 24 小时。次日,用浓度递增的 H₂O₂处理细胞 10 分钟,之后移除培养基,用 50 微升 3 号补充型裂解缓冲液在室温下轻柔振荡裂解细胞 30 分钟。
取 16 微升裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4 微升 HTRF 磷酸化或总 c-Src 检测试剂,孵育 4 小时后记录 HTRF 信号。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-6.svg,即 “H₂O₂处理的 NIH/3T3 细胞密度实验结果图”)
将 HEK293 细胞接种并培养 24 小时,先用浓度递增的博舒替尼处理细胞,再用 H₂O₂刺激细胞 10 分钟,之后移除培养基,分别用 ELISA(酶联免疫吸附试验)或 HTRF 试剂盒试剂裂解细胞。
检测 HTRF 信号和比色 ELISA 信号,结果显示:两种方法测得的博舒替尼 IC50(半数抑制浓度)值相近,表明 HTRF 检测与 ELISA 检测具有良好的相关性。
(图示标注:assay-validation-c-src-phospho-y419-7.svg,即 “HEK293 细胞中 c-Src HTRF 检测与 ELISA 检测的相关性结果图”)
c-Src 是一种膜相关非受体蛋白酪氨酸激酶,在所有细胞类型中均有广泛表达。当 c-Src 的 Tyr530 位点发生磷酸化时,激酶处于失活状态;而 Tyr530 位点去磷酸化后,Tyr419 位点发生自磷酸化,是 c-Src 完全激活的标志。
c-Src 主要由受体酪氨酸激酶(RTKs)、整合素和活性氧(ROS)激活,是关键的信号中介分子,可调控多种信号通路,如 AKT 通路、MAPK 通路、STAT 通路和 NF-κB 通路,进而参与调节细胞增殖、分化、存活、形态形成、黏附和迁移过程。因此,精确调控 Src 活性对正常细胞生长至关重要。
作为一种原癌基因衍生的基因,c-Src 在多种人类癌症(如乳腺癌、结肠癌和胰腺癌)中存在过表达且活性高度激活的情况,使其成为癌症治疗领域极具潜力的靶点。
(图示标注:phospho-pathway-c-src-64srcpeg-64srcpeh-64srcpey.svg,即 “c-Src 信号通路简化示意图”)
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF(均相时间分辨荧光)
- 裂解缓冲液兼容性:3 号裂解缓冲液、4 号裂解缓冲液、5 号裂解缓冲液
- 分子修饰类型:磷酸化(Phosphorylation)
- 产品类别:试剂盒(Kit)
- 样本体积:16 微升(µL)
- 运输条件:干冰运输
- 靶点类别:磷酸化蛋白
- 靶点物种:人、小鼠
- 技术平台:TR-FRET(时间分辨荧光共振能量转移)
- 治疗领域:肿瘤学与炎症(Oncology & Inflammation)
- 单位规格:500 个检测点