基于细胞的总 YAP 检测旨在监测 YAP 蛋白(包括磷酸化和非磷酸化形式)的表达水平。它使用与我们的磷酸化 YAP 试剂盒相同的缓冲液,能够从单个样本中分析磷酸化蛋白和总蛋白,从而更好地解读 Hippo-YAP 通路。YAP 作为 Hippo 通路中的核心介导因子,是肿瘤疾病研究的重要靶标。
总 YAP 检测用于定量细胞裂解物中 YAP 的表达水平。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 YAP 检测使用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对 YAP 蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 YAP 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团接近,从而产生 FRET(荧光共振能量转移)信号。信号强度与样本中 YAP 蛋白的浓度直接成正比,且该检测采用无需洗涤的格式即可评估蛋白表达。
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,裂解后将裂解物转移至 384 孔小体积检测板,再添加总 YAP HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测总 YAP 可在单个培养板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解,无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案支持实验微型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。
将人类细胞(HEK293、HEK293 A、U-2 OS、HeLa、乳腺癌细胞、MCF 10A)和小鼠细胞(NIH 3T3)以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种在 96 孔板中,使用无血清细胞培养基培养,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。随后移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡裂解 30 分钟。取 16 µL 裂解物转移至 384 孔白色小体积微孔板中,加入 4 µL HTRF 总 YAP Ser127 检测试剂,孵育过夜后记录 HTRF 信号。
人类乳腺癌细胞在 T175 培养瓶中于 37°C、5% CO₂条件下培养 48 小时。移除培养基后,加入 3 mL 补充的裂解缓冲液,在室温下裂解 30 分钟。离心 10 分钟后收集可溶性组分,用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,然后取 16 µL 各稀释液,分别通过蛋白质印迹法和 HTRF 检测进行平行分析。结果显示,HTRF 总 YAP 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 2 倍:使用 HTRF 检测,仅需 2,000 个细胞即可产生可检测的最小信号;而蛋白质印迹法则需要 4,000 个细胞才能产生信号。
将 100,000 个 HEK293A 细胞接种在 96 孔板中,使用无血清细胞培养基在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。然后加入血清,在不同时间点进行处理。移除细胞培养基后,加入 50 µL 裂解缓冲液,在室温下轻轻振荡裂解 30 分钟。取 16 µL 裂解物转移至 384 孔白色小体积微孔板中,加入 4 µL HTRF 总 YAP 检测试剂,孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果表明,血清处理过夜可获得最佳的总 YAP 蛋白量。
Hippo/YAP 通路通过调控细胞增殖与凋亡的平衡来调节器官大小,还参与机械信号和细胞骨架信号的转导。该通路可被多种刺激激活,如细胞黏附、高细胞密度、机械张力或缺乏生长因子等。通路激活后,首先激活 MTS 激酶,进而磷酸化 Lats 激酶。随后,YAP 在丝氨酸 127 位被磷酸化,导致其滞留于细胞质中,最终被蛋白酶体降解。因此,磷酸化的 YAP 代表该蛋白的失活形式。已有研究报道,YAP/TAZ 突变存在于某些癌症类型中(如乳腺癌、肺癌、卵巢癌和结肠癌)。
Hippo/YAP 通路通过调控细胞增殖与凋亡的平衡来调节器官大小,此外还参与机械信号和细胞骨架信号的转导。当 Hippo/YAP 通路失活时,YAP/TAZ 在细胞核内积累,并诱导细胞增殖相关基因的转录。除了其自身特性和致癌潜力外,Hippo/Yap 通路中的某些突变会导致过度生长表型,这在器官大小上可体现出来。最终,Hippo/yap 通路的失调会赋予癌细胞自我再生的特性(Cordenonsi 等人,《细胞》,2011 年;Pan D 等人,《基因与发育》,2007 年;Pan D 等人,《发育细胞》,2010 年)。
- 其他规格
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 裂解缓冲液兼容性:
- 分子修饰:总蛋白
- 产品类别:试剂盒
- 样本体积:16 µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸化蛋白
- 靶标物种:
- 技术:TR-FRET(时间分辨荧光共振能量转移)
- 治疗领域:非酒精性脂肪性肝炎 / 纤维化(NASH/Fibrosis)
- 单位规格:500 次检测