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当前位置:首页 > 产品中心 > Revvity 均相检测试剂 > HTRF EIF2 ALPHA P-S52 KIT - 50K PTS

概述

磷酸化 EIF2α 检测试剂盒旨在基于细胞对 EIF2α 上 Ser52 位点的磷酸化进行定量检测。在非酒精性脂肪性肝炎(NASH)中,肝细胞内的脂质堆积(脂肪变性)会诱发氧化应激和内质网应激,进而导致磷酸化 EIF2α(Ser52)水平升高。磷酸化的 EIF2α 会减少整体蛋白质合成,并激活转录激活因子 4(ATF4),而 ATF4 会调控参与代谢调节、营养摄取、细胞氧化还原状态及细胞凋亡相关特定基因的表达。

工作原理

磷酸化 EIF2α(Ser52)检测原理

磷酸化 EIF2α(Ser52)检测可对 Ser52 位点磷酸化的 EIF2α 进行测量。与蛋白质印迹法(Western Blot)不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。此检测采用两种标记抗体:一种标记有供体荧光团,另一种标记有受体荧光团。第一种抗体经筛选可特异性结合蛋白质上的磷酸化基序,第二种抗体则能不依赖蛋白质的磷酸化状态识别该蛋白质。蛋白质磷酸化会促使形成包含两种标记抗体的免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生荧光共振能量转移(FRET)信号。该信号强度与样品中磷酸化蛋白质的浓度直接相关,且无需洗涤步骤即可评估蛋白质的磷酸化状态。


磷酸化 EIF2α(Ser52)双板检测方案

双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,然后进行裂解,接着将裂解物转移至 384 孔低体积检测板,之后再加入磷酸化 EIF2α(Ser52)HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。


磷酸化 EIF2α(Ser52)单板检测方案

使用 HTRF 试剂检测磷酸化 EIF2α(Ser52)可在单个培养板中完成,该培养板同时用于细胞培养、刺激和裂解,无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现微型化,同时保持稳定的 HTRF 检测质量。


检测验证

人 HeLa 细胞中 HTRF 与 WB 磷酸化 EIF2α 检测对比

HeLa 细胞在添加 10% 胎牛血清(FBS)的 MEMα 培养基中,于 T175 cm² 培养瓶中培养 2 天。在 37°C 条件下,用 100 nM 花萼海绵诱癌素 A(Calyculin A)处理细胞 10 分钟,随后用 3 mL 的 1X 补充裂解缓冲液 #4 进行裂解。将细胞裂解物用补充裂解缓冲液 #4 进行系列稀释,取 16 µL 各稀释液分别通过 HTRF 和蛋白质印迹法进行平行分析。结果显示,HTRF 磷酸化 EIF2α 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 16 倍。


常山碱对总 EIF2α 和磷酸化(Ser52)EIF2α 的药效作用

用不同浓度的常山碱处理 HepG2 细胞和 NIH-3T3 细胞。裂解后,将裂解物转移至低体积白色微孔板中,然后加入 4 µL HTRF 磷酸化 EIF2α 或总 EIF2α 检测抗体。孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果显/icon/kefu-1.png" alt="电话咨询" width="30" height="30"> 电话咨询
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  • f; font-size: 16px;">单位规格:50,000 个检测点


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    实验在 HeLa 细胞上进行,方法与上一节所述相同,不同之处在于用不同浓度的每种 CREBBP/p300 PROTAC(或弹头 GNE-781)处理细胞 4 小时或 20 小时。如前所述,使用相应的 HTRF 试剂盒检测总 CREBBP 和总 p300,并使用 ATPlite 1step 发光试剂盒测量细胞活力。


    三种 PROTAC 均诱导 CREBBP 和 p300 的剂量依赖性降解,而弹头 GNE-781 则无此作用。这些化合物对两种蛋白质的作用相近(如效力和动力学)。两种处理时间后,三种降解剂的效力排名相同,其中沙利度胺 - NH-CBP/P300 配体 2 的效力分别是 PROTAC CBP/p300 Degrader-1 的 4 倍和 dCBP-1 的 10 倍(基于 DC50 值)。处理 20 小时后,PROTAC CBP/p300 Degrader-1 和 dCBP-1 的效力显著提高(2.5 至 5 倍),沙利度胺 - NH-CBP/P300 配体 2 的降解效率也从 65% 提高到 80%。值得注意的是,即使处理 20 小时,这些化合物也未诱导明显的细胞毒性作用(ATPlite 1step 检测,数据未显示)。


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    总 CREBBP 和总 p300 检测特异性的验证

    将 HeLa 细胞接种到 96 孔培养板中(总 CREBBP 检测为每孔 50,000 个细胞,总 p300 检测为每孔 12,500 个细胞),使用完全培养基,在 37°C、5% CO₂条件下培养过夜。次日,用针对人 CREBBP 或其同源物人 p300 的 ON-TARGETplus SMARTPool siRNA 转染细胞,同时使用非靶向 siRNA 作为阴性对照。用 siRNA 孵育 24 小时后,更换培养基再孵育 24 小时,然后用 50 µL 补充的 1 号裂解缓冲液裂解细胞。细胞裂解后,如第一部分所述,使用相应的 HTRF 试剂盒检测总 CREBBP 和总 p300,并使用 ATPlite 1step 发光试剂盒测量细胞活力。


    siRNA 实验表明,HTRF 总 CREBBP 和总 p300 试剂盒均能特异性检测目标蛋白质,而不会识别该家族的另一个成员。用 CREBBP siRNA 处理使总 CREBBP 检测的信号降低 70%,而敲低 p300 并未导致该检测的信号降低。相反,用 p300 siRNA 处理使总 p300 检测的信号降低 86%,而沉默 CREBBP 基因并未导致该检测的信号降低。在 CREBBP 和 p300 siRNA 存在的情况下,ATPlite 发光信号保持稳定,表明 HTRF 信号的降低与细胞毒性作用无关。


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    不同人源和鼠源细胞系中总 CREBBP 水平的评估

    实验采用贴壁细胞的双板检测方案进行。将人源细胞系 SH-SY5Y、MCF7、HeLa、A431 和 A549,以及鼠源细胞系 NIH-3T3 和 Neuro-2a 接种到 96 孔培养板中(每孔 100,000 个细胞,使用完全培养基),在 37°C、5% CO₂条件下培养 24 小时。次日,用 50 µL 补充的 1 号裂解缓冲液裂解细胞,将 16 µL 裂解物转移至小体积白色微孔板(ProxiPlate-384 Plus,货号 6008280/9)中,再加入 4 µL HTRF 总 CREBBP 试剂盒检测抗体。过夜孵育后记录 HTRF 信号。


    HTRF 总 CREBBP 试剂盒适用于人源和鼠源细胞模型,能有效检测不同表达水平细胞系中的 CREBBP。


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    HTRF 总 CREBBP 检测与蛋白质印迹法(WB)的比较

    将 HeLa 细胞接种到 T175 培养瓶中,在含完全培养基的条件下于 37°C、5% CO₂环境中培养,直至汇合度达到约 90%。用 3 mL 补充的 1 号裂解缓冲液裂解细胞,并用补充的裂解缓冲液对裂解物进行系列稀释。为检测总 CREBBP,将 16 µL 各稀释液转移至小体积白色微孔板(ProxiPlate-384 Plus,货号 6008280/9)中,并加入 4 µL HTRF 总 CREBBP 检测试剂。取等量裂解物进行蛋白质印迹法检测,与 HTRF 检测进行平行比较。


    使用 HTRF 总 CREBBP 检测时,仅需每孔 500 个细胞即可检测到显著信号,而使用蛋白质印迹法则需要 4,000 个细胞才能获得最低化学发光信号。因此,在该条件下,HTRF 总 CREBBP 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 8 倍。


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    简化通路