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"SF Pro Icons", "PingFang SC", "Hiragino Sans GB", "Microsoft YaHei", "Helvetica Neue", Helvetica, Arial, sans-serif; text-wrap-mode: wrap; background-color: rgb(255, 255, 255); color: rgba(0, 0, 0, 0.85) !important;">正如预期的那样,碱性磷酸酶诱导 CDK2 的 Tyr15 位点几乎完全去磷酸化,而该激酶的总水平不受此处理的调节。


HeLa 细胞中碱性磷酸酶对 CDK2 Tyr15 的去磷酸化作用

使用细胞周期阻滞剂调节磷酸化 CDK2(Tyr15)

将人 HeLa 细胞和小鼠 NIH-3T3 细胞在 96 孔板中(50,000 个细胞 / 孔)培养 24 小时,然后分别用细胞周期阻滞剂阿非迪霉素和诺考达唑处理 16 小时。


细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并添加 4 µL HTRF 磷酸化 CDK2(Tyr15)或总 CDK2 检测抗体。 overnight 孵育后记录 HTRF 信号。


正如预期的那样,阿非迪霉素(可将细胞阻滞在 S 期早期)诱导抑制性位点 Tyr15 处的磷酸化 CDK2 呈剂量依赖性积累。


相反,诺考达唑(可将细胞阻滞在 G2/M 期交界处)诱导 Tyr15 位点的 CDK2 磷酸化呈剂量依赖性降低。


无论细胞如何处理,该激酶的表达水平都保持相对稳定。


阿非迪霉素对 HeLa 细胞中磷酸化 CDK2(Tyr15)的调节作用


诺考达唑对 NIH-3T3 细胞中磷酸化 CDK2(Tyr15)的调节作用

使用 Wee1 激酶抑制剂抑制磷酸化 CDK2(Tyr15)

将 HeLa 细胞在 96 孔板中(50,000 个细胞 / 孔)培养 24 小时,然后用 Wee1 激酶抑制剂 Adavosertib 和 PD0166285 处理 2 小时。


细胞裂解后,将 16 µL 裂解物转移到 384 孔小体积白色微孔板中,并添加 4 µL HTRF 磷酸化 CDK2(Tyr15)或总 CDK2 检测抗体。 overnight 孵育后记录 HTRF 信号。


正如预期的那样,两种 Wee1 激酶抑制剂都触发了 Tyr15 位点的磷酸化 CDK2 呈剂量依赖性降低,而蛋白质的表达水平不受这些处理的调节。


Adavosertib 对 HeLa 细胞中磷酸化 CDK2(Tyr15)的抑制作用


PD0166285 对 HeLa 细胞中磷酸化 CDK2(Tyr15)的抑制作用

HTRF 总 CDK2 检测与蛋白质印迹法的比较

将 HeLa 细胞在 T175 培养瓶中的完全培养基中于 37°C、5% CO₂条件下培养。孵育 48 小时后,用 3 mL 补充的 2 号裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。


使用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,将 16 µL 每种稀释液转移到小体积白色微孔板中,然后添加 4 µL HTRF 总 CDK2 检测试剂。使用等量的裂解物进行 HTRF 和蛋白质印迹法的平行比较。


使用 HTRF 总 CDK2 检测时,800 个细胞 / 孔就足以检测到显著信号,而使用蛋白质印迹法则需要 1,600 个细胞才能获得最小的化学发光信号。因此,在这些条件下,HTRF 总 CDK2 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的两倍。


HTRF 总 CDK2 试剂盒与蛋白质印迹法的比较

简化通路

CDK2 在细胞分裂周期中的作用

CDK2(细胞周期蛋白依赖性激酶 2)是协调哺乳动物细胞周期进程的 CDK 亚家族成员之一(还包括 CDK1、CDK4 和 CDK6)。


有丝分裂原信号(如生长因子)通过诱导细胞周期蛋白 D 的合成,触发细胞进入细胞周期的 G1 期,从而导致活性 CDK4/6 - 细胞周期蛋白 D 复合物的形成。CDK4 和 CDK6 使视网膜母细胞瘤(RB)蛋白发生单磷酸化,此时 RB 蛋白仍与转录因子 E2F 结合,但一些基因(如细胞周期蛋白 E)可以被转录。在 G1 期晚期和 S 期早期,细胞周期蛋白 E 与 CDK2 相互作用并激活它,进而使 RB 蛋白上的其他位点磷酸化,导致其完全失活。因此,S 期进程所需的 E2F 应答基因被诱导,例如细胞周期蛋白 A,它随后与 CDK2 相互作用形成细胞周期蛋白 A/CDK2 复合物。激活的 CDK2 最终使 Cdc25B 和 Cdc25C 磷酸酶磷酸化,而这两种磷酸酶又会激活 CDK1,CDK1 是细胞分裂周期中 G2 期和 M 期进程所必需的。


总 CDK2 信号通路

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