这种基于 HTRF 细胞的检测方法可便捷且准确地检测人源 Aurora B 蛋白(与 AURKB 基因相关),该蛋白在真核生物中广泛表达。Aurora B 属于丝氨酸 / 苏氨酸 Aurora 激酶家族(包括 Aurora A 和 Aurora C),通过调控有丝分裂(尤其是染色体分离过程)对细胞分裂至关重要。其激活源于苏氨酸 232 位点的自磷酸化,该过程主要发生在细胞分裂周期的 S 期晚期至 M 期,或 DNA 损伤应答过程中。Aurora 激酶在多种癌症(白血病、结肠癌、前列腺癌和乳腺癌)中存在过表达,这使其成为 Aurora 激酶抑制剂(AKIs)研发的热门靶点。
磷酸化 Aurora B(Thr232)检测用于测量苏氨酸 232 位点磷酸化的 Aurora B。与蛋白质印迹法不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。磷酸化 Aurora B(Thr232)检测使用两种标记抗体:一种带有供体荧光团,另一种带有受体荧光团。第一种抗体经筛选可特异性结合蛋白质上的磷酸化基序,第二种抗体则能不依赖蛋白质的磷酸化状态识别该蛋白质。蛋白质磷酸化会促使形成包含两种标记抗体的免疫复合物,使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样品中磷酸化蛋白质的浓度直接相关,且在无需洗涤的检测格式中即可评估蛋白质的磷酸化状态。
双板方案包括:先在 96 孔板中培养细胞,裂解后将裂解物转移至 384 孔小体积检测板,再加入磷酸化 Aurora B(Thr232)HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。
HTRF 总 BRD2 检测的双板方案
使用 HTRF 试剂检测磷酸化 Aurora B(Thr232)可在单个板中完成,该板可用于细胞培养、刺激和裂解,无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现微型化,同时保持稳定的 HTRF 质量。
HTRF 总 BRD2 检测的单板方案
将 HeLa 细胞(永生化人宫颈癌细胞系)以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中,在完全培养基中培养 24 小时以使其贴壁。移除细胞培养基后,用浓度递增的诺考达唑在 37°C、5% CO₂条件下处理 20 小时。过夜处理(20 小时)后,移除细胞培养基,向每个孔中加入 50μl 补充的 1 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡 30 分钟。细胞裂解后,将 16μL 裂解物转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4μL HTRF 总 Aurora B 或磷酸化 Aurora B(Thr232)检测抗体。过夜孵育后记录 HTRF 信号。
诺考达唑是一种微管去稳定剂,可诱导 G2/M 期细胞周期阻滞。已有研究表明,经诺考达唑处理的细胞会呈现出更高的 Aurora 蛋白表达水平,以克服细胞周期阻滞。
正如预期的那样,所得结果显示,经诺考达唑处理后,总 Aurora B 蛋白和苏氨酸 232 磷酸化 Aurora B 蛋白的水平均有所增加。
将 HeLa 细胞(永生化人宫颈癌细胞系)以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中,在完全培养基中培养 24 小时以使其贴壁。移除细胞培养基后,在含有 5% 胎牛血清的细胞培养基中,用浓度递增的抑制剂(托沙替尼或阿利塞替尼)与 200nM 的诺考达唑共同孵育 20 小时(37°C、5% CO₂)。过夜处理后,移除细胞培养基,向每个孔中加入 50μl 补充的 1 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡 30 分钟。细胞裂解后,将 16μL 裂解物转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4μL HTRF 总 Aurora B 或磷酸化 Aurora B(Thr232)检测抗体。过夜孵育后记录 HTRF 信号。
文献中已证实这两种化合物对磷酸化 Aurora B(苏氨酸 232)具有抑制作用,最大抑制率可达 96%,且不会影响总蛋白水平 [2,3,4]。
正如预期的那样,所得结果显示,经托沙替尼或阿利塞替尼处理后,Aurora B 的苏氨酸 232 位点磷酸化呈明显的剂量依赖性抑制,而 Aurora B 蛋白的表达水平保持不变。
[2]:Sells 等人,《ACS 药物化学快报》,2015 年;[3]:Tyler 等人,《细胞周期》,2007 年;[4]:Qi 等人,《白血病研究》,2013 年
将 HeLa 细胞(永生化人宫颈癌细胞系)以 100,000 个细胞 / 孔的密度接种到 96 孔培养处理板中,在完全培养基中培养 24 小时以使其贴壁。移除细胞培养基后,在含有 5% 胎牛血清的细胞培养基中,用浓度递增的抑制剂(MLN8054、托沙替尼或阿利塞替尼)与 200nM 的诺考达唑共同孵育 20 小时(37°C、5% CO₂)。过夜处理后,移除细胞培养基,向每个孔中加入 50μl 补充的 1 号裂解缓冲液(1X),在室温下轻轻振荡 30 分钟。细胞裂解后,将 16μL 裂解物转移至 384 孔小体积白色微孔板中,加入 4μL HTRF 总 Aurora A(#64AURATPEG/H)、磷酸化 Aurora A(Thr288)(#64AURAT2PEG/H)、总 Aurora B(#64AURBTPEG/H)或磷酸化 Aurora B(Thr232)检测抗体。过夜孵育后记录 HTRF 信号。
结果表明,抑制剂对磷酸化的抑制呈剂量依赖性,且具有预期的选择性 [2,3,4,5]:
- 托沙替尼是一种 Aurora A 和 Aurora B 的泛抑制剂。
- 阿利塞替尼对 Aurora A 的选择性是对 Aurora B 的 20 倍。
- MLN8054 是一种高选择性 Aurora A 抑制剂(至少在 1μM 浓度下不会抑制 Aurora B 的苏氨酸 232 位点磷酸化)。
Aurora A 和 Aurora B 蛋白的表达水平保持不变(数据未显示)。
[2]:Manfredi 等人,《美国国家科学院院刊》,2006 年;[3]:Sells 等人,《ACS 药物化学快报》,2015 年;[4]:Tyler 等人,《细胞周期》,2007 年;[5]:Qi 等人,《白血病研究》,2013 年
在 96 孔板中(25,000 个细胞 / 孔),用 25nM 的 SMARTPool ON-TARGETplus siRNA(Horizon 公司)处理 HeLa 细胞,这些 siRNA 分别特异性靶向 Aurora A(#L-003545-01-0005)、Aurora B(#L-003326-00-0005)和 Aurora C(#L-019573-00-0005),或使用非靶向 siRNA(#D-001810-10-20,作为对照),在 100μL 体系中处理 24 小时。移除细胞培养基后,在完全细胞培养基中加入 300nM 诺考达唑刺激细胞,在 37°C、5% CO₂条件下额外孵育 24 小时。移除培养基后,用 50μL 1 号裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟,将 16μL 裂解物转移至小体积白色微孔板中,然后加入 4μL 预混合的 HTRF 磷酸化 Aurora B(Thr232)检测抗体。室温过夜孵育后记录 HTRF 信号。
用 Aurora B siRNA 处理细胞会导致磷酸化 Aurora B 显著下调,与转染非靶向 siRNA 的细胞相比,信号降低 64%。
尽管这 3 种家族蛋白之间具有高度同源性,但用 Aurora A 或 Aurora C siRNA 处理的细胞未观察到信号降低,这证明了该试剂盒的特异性和选择性。
HTRF 磷酸化 Aurora B(Thr232)检测能够有效检测多种表达不同水平该蛋白的人细胞模型中的内源性磷酸化 Aurora B 蛋白。
将 HeLa 细胞在 T175 培养瓶中的完全培养基中培养,37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。孵育后,先用 300nM 诺考达唑在 37°C、5% CO₂条件下刺激 20 小时,然后用 3mL 补充的 1 号裂解缓冲液(1X)在室温下轻轻振荡裂解 30 分钟。
用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,将 16μL 各稀释液转移至小体积白色微孔板中,然后加入 4μL 磷酸化 Aurora B(Thr232)检测试剂。取等量裂解物进行蛋白质印迹法(WB)和 HTRF 检测的平行比较。
蛋白质印迹法与 HTRF 的平行比较表明,至少在这些实验条件下,HTRF 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 16 倍。
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 兼容裂解缓冲液:裂解缓冲液 1、裂解缓冲液 4
- 分子修饰:磷酸化
- 产品类别:试剂盒
- 样品体积:16μL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸化蛋白
- 靶标物种:人
- 技术:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 单位规格:500 个检测点