这款基于细胞的 HTRF 检测(磷酸化 STING Ser366 检测)可便捷且精准地定量 Ser366 位点磷酸化的 STING 蛋白,是研究 STING 通路活性的核心工具。其生物学背景如下:当病原体感染发生时,胞质中的双链 DNA(dsDNA)会与 DNA 传感器 cGAS(环磷酸鸟苷 - 腺苷合成酶)结合;激活后的 cGAS 进一步促使 STING 蛋白被 TBK1 激酶磷酸化;磷酸化的 STING 能与 IRF3(干扰素调节因子 3)结合,最终诱导 I 型干扰素(IFNs)的产生,启动先天免疫反应。而 STING 通路的关闭则依赖于自噬介导的 STING 蛋白降解过程,形成通路的负反馈调节。
在肿瘤免疫领域,激活 STING 通路已在临床前模型中展现出显著的抗肿瘤潜力 —— 通过激活机体先天免疫应答,增强对肿瘤细胞的杀伤作用,因此该通路成为开发癌症治疗方案的重要靶点,相关检测技术也为药物研发提供关键支持。
该检测通过特异性抗体与荧光共振能量转移(FRET)技术,实现对 Ser366 位点磷酸化 STING 的定量分析,核心优势在于无需凝胶、电泳或转膜,全程为板基操作,流程高效且结果稳定。
具体机制如下:
- 双抗体设计:检测体系包含两种标记抗体 —— 一种偶联供体荧光团,仅特异性结合 STING 蛋白上 Ser366 磷酸化的基序(仅识别磷酸化 STING);另一种偶联受体荧光团,可不依赖磷酸化状态,普遍识别 STING 蛋白本身(识别总 STING)。
- 免疫复合物与 FRET 信号:当样本中存在磷酸化 STING 时,两种抗体可同时结合于同一 STING 分子,形成 “供体 - 受体” 荧光团近距离接触的免疫复合物;此时供体荧光团被激发后,能量会转移至受体荧光团,产生 FRET 信号。
- 定量关系与检测模式:FRET 信号的强度与样本中磷酸化 STING 的浓度呈直接正相关,可通过信号值计算磷酸化蛋白水平;且检测采用 “免洗涤” 模式,无需额外清洗步骤,大幅减少操作误差与时间成本。
(标注:Phospho how it works phospho sting,即 “磷酸化 STING(Ser366)检测原理示意图”)
双板方案适用于需同步监测细胞状态的场景,操作流程分三步:
- 细胞培养与处理:在 96 孔板中完成细胞培养(如 THP1-R232 细胞)、通路刺激(如 2’-3’ cGAMP 处理)与裂解。
- 样本转移:将裂解后的细胞样本转移至小体积检测板(可选 HTRF 384 孔小体积板或 96 孔小体积板),适配微量样本检测需求。
- 信号检测:加入磷酸化 STING(Ser366)HTRF 检测试剂,孵育后读取信号。
该方案的核心优势是可同步监测细胞活力与汇合度,能排除细胞存活状态差异对通路激活检测结果的干扰,确保数据可靠性(例如判断磷酸化信号变化是通路激活导致,而非细胞数量减少)。
(标注:Sting plate assay protocol,即 “磷酸化 STING(Ser366)双板检测方案流程示意图”)
单板方案专为高通量筛选(HTS) 设计,全程在同一培养板中完成:
- 一体化操作:在单块 96 孔或 384 孔板中依次完成细胞接种、培养、通路刺激(如药物处理)与裂解,无需跨板转移样本。
- 免洗涤检测:直接在板中加入检测试剂,孵育后读取信号,无洗涤步骤。
该方案的优势在于微型化与高效性:既能节省样本与试剂用量(适配小体积反应体系),又能减少操作步骤与交叉污染风险,同时保持 HTRF 技术的高稳定性,可满足大规模药物筛选(如 STING 激动剂筛选)或批量样本分析的需求。
(标注:Sting plate assay protocol,即 “磷酸化 STING(Ser366)单板检测方案流程示意图”)
通过三类核心实验验证了检测的特异性、准确性与灵敏度,确保其适用于 STING 通路研究场景:
实验设计:将人 THP1-R232 细胞(STING 通路敏感细胞系,购自 Invivogen)以 4×10⁵个细胞 / 孔、25μL 体系接种到 96 孔板;用浓度递增的 2’-3’ cGAMP(STING 通路特异性激动剂,5μL 体系)刺激细胞 4 小时;随后加入 10μL 4× 浓度的 4 号补充型裂解缓冲液,室温轻柔振荡裂解 30 分钟。取 16μL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 4μL HTRF 磷酸化 STING / 总 STING 检测抗体;同时取 4μL 裂解液用 HTRF α- 微管蛋白(内参)试剂盒检测,排除样本量差异干扰;室温孵育过夜后读取信号。 结果与结论:
- 2’-3’ cGAMP 可显著激活 STING 通路,使 Ser366 位点磷酸化水平提升6 倍,与已知通路激活机制完全一致;
- 伴随磷酸化水平升高,STING 总蛋白表达下调(符合自噬介导的 STING 降解负反馈机制);
- α- 微管蛋白表达稳定,证明磷酸化信号变化并非样本量差异导致。该实验验证了检测对 STING 通路激活的特异性响应能力。
(标注:Assay validation sting phospho,即 “2’-3’ cGAMP 诱导 THP1 细胞 STING 磷酸化的检测结果图”)
实验设计:延续上述 THP1-R232 细胞模型,用浓度递增的 2’-3’ cGAMP 刺激后裂解细胞;取 16μL 裂解液分别通过 HTRF 检测与 Western Blot(ECL 化学发光)检测,对两种方法的定量结果进行平行对比;采用单因素方差分析(One way-Anova)进行统计检验。 结果与结论:
- HTRF 检测可精准量化化合物对 STING 的调控效应:400μM cGAMP 处理后,总 STING 与磷酸化 STING 水平均显著下降(P 值 < 0.0001),统计结果可靠;
- Western Blot 虽能观察到趋势,但定量精度低、重复性差,且无法实现高效统计分析。该实验证明 HTRF 检测在定量准确性与统计适用性上优于传统 Western Blot。
(标注:Assay validation sting phospho,即 “HTRF 与 Western Blot 定量激动剂调控 STING 的对比结果图”)
实验设计:将 THP1-R232 细胞接种到 T175 培养瓶,孵育 2 天后用 100μM 2’-3’ cGAMP 刺激 4 小时,裂解后离心收集上清;对裂解液进行系列稀释,取 16μL 各稀释度样本用 HTRF 检测;同时取等量稀释样本进行 Western Blot(ECL 检测),对比两种方法的最低检测细胞量。 结果与结论:
- HTRF 检测仅需4,000 个细胞 / 孔即可检测到显著信号;
- Western Blot(ECL)需63,000 个细胞 / 孔才能检测到最低信号;
- 该实验条件下,HTRF 检测的灵敏度是 Western Blot 的16 倍,大幅降低样本用量,尤其适用于稀缺样本(如原代细胞)的检测。
(标注:Assay validation sting phospho,即 “磷酸化 STING HTRF 检测与 Western Blot 的灵敏度对比结果图”)
STING(干扰素基因刺激蛋白)是先天免疫的关键分子,其通路激活与调控过程可分为 “激活 - 效应 - 关闭” 三阶段,具体如下:
激活阶段:
- 触发条件:病原体感染(如病毒、细菌)释放的 dsDNA,或细胞凋亡时线粒体收缩释放的内源性 dsDNA;
- 核心步骤:dsDNA 结合并激活胞质中的 DNA 传感器 cGAS;激活的 cGAS 催化生成环二核苷酸2’-3’ cGAMP,该分子作为第二信使结合内质网上的 STING 蛋白,启动 STING 激活。
效应阶段:
- STING 被 TBK1 激酶磷酸化后,与 TBK1 形成复合物;
- 复合物招募并激活 IRF3(干扰素调节因子 3),使其形成二聚体;
- 激活的 IRF3 二聚体进入细胞核,结合干扰素基因启动子区域,诱导I 型干扰素(IFN-α/β) 转录;
- 同时,STING 通路还可激活 NF-κB 信号,调控炎症细胞因子(如 TNF-α、IL-6)的表达,协同增强免疫应答。
关闭阶段(负反馈):
- 为避免免疫反应过度激活造成组织损伤,DNA 刺激的 cGAS-STING-TBK1 通路会触发 STING 蛋白的降解;
- 降解机制:通过p62/SQSTM1 介导的自噬途径,STING 被包裹进自噬体并与溶酶体融合,最终被降解;
- 结果:STING 蛋白水平下降,I 型干扰素产生停止,通路活性恢复基础状态。
(标注:Phospho pathway sting,即 “STING 信号通路简化示意图”)
- 应用领域:细胞信号传导(STING 通路活性检测)
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF(均相时间分辨荧光)
- 裂解缓冲液兼容性:1 号、2 号、3 号、4 号、5 号裂解缓冲液(适配不同样本处理需求)
- 分子修饰类型:磷酸化(特异性针对 STING Ser366 位点)
- 产品类别:试剂盒(Kit)
- 样本体积:16 μL(微量样本适配)
- 运输条件:干冰运输(确保试剂活性)
- 靶点类别:磷酸化蛋白
- 靶点物种:人(Human)
- 技术平台:TR-FRET(时间分辨荧光共振能量转移,降低背景信号干扰)
- 治疗领域:感染性疾病(病原体感染相关研究)、肿瘤学与炎症(肿瘤免疫、炎症通路研究)
- 单位规格:10,000 个检测点(适用于大规模实验或长期项目)