基于细胞的总 YAP 检测旨在监测 YAP 蛋白(包括磷酸化和非磷酸化形式)的表达水平。它使用与我们的磷酸化 YAP 试剂盒相同的缓冲液,能够从单个样品中分析磷酸化蛋白和总蛋白,从而更好地解读 Hippo-YAP 通路。YAP 作为 Hippo 通路的核心介导因子,是肿瘤疾病研究的重要靶点。
总 YAP 检测可定量细胞裂解物中 YAP 的表达水平。与蛋白质印迹法不同,该检测完全基于微孔板进行,无需凝胶、电泳或转膜步骤。总 YAP 检测使用两种标记抗体:一种偶联供体荧光团,另一种偶联受体荧光团。两种抗体都对该蛋白上的特定表位具有高度特异性。当细胞提取物中存在 YAP 时,添加这些偶联物会使供体荧光团与受体荧光团靠近,从而产生 FRET 信号。信号强度与样品中蛋白质的浓度直接成正比,并提供了一种在无需洗涤的检测格式下评估蛋白质表达的方法。
双板方案包括先在 96 孔板中培养细胞,然后裂解,再将裂解物转移到 384 孔小体积检测板中,之后添加总 YAP HTRF 检测试剂。该方案能够监测细胞的活力和汇合度。
使用 HTRF 试剂检测总 YAP 可在单个用于培养、刺激和裂解的板中进行。无需洗涤步骤。这种为高通量筛选(HTS)设计的方案能够实现小型化,同时保持稳定的 HTRF 质量。
将人类细胞(HEK293、HEK293A、U-2 OS、HeLA、乳腺癌细胞、MCF 10A)和小鼠细胞(NIH 3T3)以每孔 100,000 个细胞的密度接种到 96 孔板中,使用去血清的细胞培养基,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。随后移除培养基,用 50 µL 裂解缓冲液在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移到 384 孔白色小体积微孔板中,并添加 4 µL HTRF 总 YAP(Ser127)检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。
将人类乳腺癌细胞在 T175 培养瓶中于 37°C、5% CO₂条件下培养 48 小时。移除培养基后,用 3 mL 补充的裂解缓冲液在室温下裂解细胞 30 分钟。离心 10 分钟后收集可溶性组分。用补充的裂解缓冲液对细胞裂解物进行系列稀释,然后取 16 µL 各稀释液,分别通过蛋白质印迹法和 HTRF 进行平行分析。HTRF 总 YAP 检测的灵敏度是蛋白质印迹法的 2 倍。使用 HTRF 时,仅需 2,000 个细胞即可检测到最低信号,而蛋白质印迹法则需要 4,000 个细胞才能产生信号。
将 100,000 个 HEK293A 细胞接种到 96 孔板中,使用去血清的细胞培养基,在 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。加入血清并分别刺激不同时间后,移除细胞培养基,用 50 µL 裂解缓冲液在室温下轻轻振荡裂解细胞 30 分钟。将 16 µL 裂解物转移到 384 孔白色小体积微孔板中,并添加 4 µL HTRF 总 YAP 检测试剂。孵育过夜后记录 HTRF 信号。结果显示,需要将细胞暴露于血清中过夜才能获得最佳量的总 YAP 蛋白。
Hippo/YAP 通路通过调控细胞增殖与凋亡之间的平衡来调节器官大小,还参与机械信号和细胞骨架信号的转导。该通路可被多种刺激激活,如细胞黏附、高细胞密度、机械张力或缺乏生长因子等。通路激活后,首先激活 MTS 激酶,进而磷酸化 Lats 激酶。随后,YAP 在丝氨酸 127 位点被磷酸化,导致其滞留于细胞质中,最终被蛋白酶体降解。因此,磷酸化的 YAP 代表该蛋白质的失活形式。已有研究报道,在某些类型的癌症(如乳腺癌、肺癌、卵巢癌和结肠癌)中存在 YAP/TAZ 突变。
Hippo/YAP 通路通过调控细胞增殖与凋亡之间的平衡来调节器官大小,此外还参与机械信号和细胞骨架信号的转导。当 Hippo/YAP 通路失活时,YAP/TAZ 在细胞核内积累,并诱导参与细胞增殖的基因转录。除了其自身特性和癌基因潜能外,Hippo/Yap 通路中的某些突变会导致过度生长表型,这在器官大小上可体现出来。最后,Hippo/yap 通路的失调会赋予癌细胞自我再生的特性(Cordenonsi 等人,《细胞》2011 年;Pan D 等人,《基因与发育》2007 年;Pan D 等人,《发育细胞》2010 年)。
- 应用领域:细胞信号传导
- 品牌:HTRF
- 检测方式:HTRF
- 分子修饰:总(蛋白)
- 产品类别:试剂盒
- 样品体积:16 µL
- 运输条件:干冰运输
- 靶标类别:磷酸化蛋白
- 靶标物种:人、小鼠
- 技术原理:时间分辨荧光共振能量转移(TR-FRET)
- 治疗领域:非酒精性脂肪性肝炎 / 纤维化(NASH/Fibrosis)
- 单位规格:50,000 个检测点