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人 c-Myc 是一种多功能转录因子蛋白,参与细胞周期进程、凋亡及细胞转化,还可通过调控组蛋白乙酰化调节整体染色质结构。该试剂盒用于特异性、快速定量细胞中的 c-Myc 原癌基因。
人 c-Myc 检测采用夹心免疫分析技术,涉及两种特异性抗人 c-Myc 抗体:一种标记铕穴状化合物(Europium Cryptate,供体),另一种标记 d2(受体)。信号强度与样本中 c-Myc 的浓度呈正比。该方案针对 384 孔板格式优化,可轻松缩小或扩大检测规模,仅需少量样本。检测试剂可预先混合,单次加样直接检测,全程无需洗涤步骤。(标注:63adk053peh1.svg 为图表标识,对应 “人 c-Myc 检测原理”)
采用双板实验方案:细胞在同一 96 孔培养板中接种、刺激并裂解,随后将裂解液转移至检测板,使用 HTRF 试剂检测人 c-Myc。该方案可监测细胞活力与汇合度。标记 HTRF 荧光团的抗体可预先混合,单次加样简化流程,按比例调整试剂体积即可适配 96 孔至 384 孔板格式。(标注:63adk053peh2.svg 为图表标识,对应 “人 c-Myc 检测流程”)
HeLa 细胞在 T175 培养瓶中 37°C、5% CO₂条件下培养 48 小时,移除培养基后用 3 mL 补充型裂解缓冲液室温裂解 45 分钟。将细胞裂解液用补充型裂解缓冲液系列稀释,取 10 µL 各稀释液分别进行 Western Blot 和 HTRF 平行检测。结果显示,HTRF c-Myc 检测仅需 1000 个细胞即可获得最低检测信号,而 Western Blot 需 4000 个细胞,HTRF 检测灵敏度至少是 Western Blot 的 4 倍。(标注:assay-validation-human-c-myc-cell-based-3.svg 为图表标识,对应 “与 Western Blot 对比结果”)
将 100,000 个人 MCF7、A549、HeLa、HTC116 和 HEK293T 细胞接种于 96 孔板,用细胞培养基 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。移除培养基后,加入 50 µL 裂解缓冲液,室温温和振荡裂解 30 分钟。取 10 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 10 µL HTRF c-Myc 检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-human-c-myc-cell-based-4.svg 为图表标识,对应 “多细胞系检测结果”)
将 40,000 个 HeLa 细胞接种于 96 孔板,用细胞培养基 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的 JQ1 孵育 24 小时后,移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液,室温温和振荡裂解 45 分钟。取 10 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 10 µL HTRF c-Myc 检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-human-c-myc-cell-based-5.svg 为图表标识,对应 “JQ1 抑制剂作用结果”)
将 40,000 个 HeLa 细胞接种于 96 孔板,用细胞培养基 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的 TSA 孵育 24 小时后,移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液,室温温和振荡裂解 45 分钟。取 10 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 10 µL HTRF c-Myc 检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-human-c-myc-cell-based-6.svg 为图表标识,对应 “TSA 抑制剂作用结果”)
将 10,000 个 HeLa 或 A549 细胞接种于 96 孔板,用细胞培养基 37°C、5% CO₂条件下孵育 24 小时。用不同浓度的抑制剂(U0126、甲氨蝶呤、吉西他滨)孵育 72 小时后,移除培养基,加入 50 µL 裂解缓冲液,室温温和振荡裂解 45 分钟。取 10 µL 裂解液转移至 384 孔小体积白色微孔板,加入 10 µL HTRF c-Myc 检测试剂,过夜孵育后记录 HTRF 信号。(标注:assay-validation-human-c-myc-cell-based-7.svg 为图表标识,对应 “细胞生长抑制剂作用结果”)